Perfil de metabolitos y actividad antienvejecimiento del arroz Koji fermentado con Aspergillus Oryzae y Aspergillus Cristatus: un estudio comparativo Ⅱ

3. Discusión

Diferentes partes del arroz, como la cáscara, el salvado, el embrión y el endospermo, desde la superficie hasta el interior, tienen diferentes composiciones químicas (26). En particular, el salvado de arroz contiene variosácidos fenólicosyflavonoides, que se sabe que exhibenactividad antioxidante.Además, la pared celular del arroz está compuesta por una estructura de arabinoxilano que incluye xilosa, arabinosa, ácido ferúlico y ácido ferúlico (27).La pared celular del arroz es generalmente difícil de penetrar, y el arroz koji ofrece la ventaja de una fácil penetración en la pared celular de arroz por varias enzimas como la proteasa y la glucosidasa de los microbios del inóculo (24. Por lo tanto, el arroz koii muestraniveles más altos de actividad inhibidora de la tirosinasayactividades antioxidantesque sus materias primas porque contiene valiosos compuestos enriquecidos (28.

Haga clic aquí para obtener más información sobre la actividad antioxidante de Cistanche

Seguimos el enfoque de la metabolómica para el arroz koji fermentado con dos hongos filamentosos diferentes, que dilucidaron diferencias significativas en la actividad enzimática, la producción de metabolitos y las bioactividades. Las actividades de varias enzimas tales como a-amilasa, &glucosidasa y -glucosidasa producidas por A. cristatus y A. oryzae inoculadas aumentaron con el tiempo de fermentación (Figura 3). Debido a que estas enzimas descomponen la estructura del arabinoxilano, se separaron diversos ácidos fenólicos de la pared celular de arroz en ambas muestras, como se muestra en la Figura 2. Estos ácidos fenólicos son antioxidantes potenciales que alivian el estrés oxidativo 291. Por lo tanto, las actividades antioxidantes y el ensayo de TPC aumentaron con aumentando el tiempo de fermentación a medida que se mejoró el contenido de ácido fenólico (Figuras 2 y 4) En particular, RAC tiene un contenido más alto de flavonoides que RAO porque tiene un nivel más alto de -glucosidasa, que hidroliza el enlace -glucosídico de la pared celular del arroz durante el crecimiento de A. cristatus en arroz koji. Además de desprenderse de la pared celular del arroz, la glucosidasa hidroliza la forma de glucósido flavonoide a una forma de aglicona que posee una mayor actividad antioxidante 30]. El aumento de la forma de glucósido de flavonoides y la forma de aglicón aumentan las actividades antioxidantes como ABTS, DPPH FRAP y TFC, lo que puede afectar la actividad antioxidante de RAC, como se muestra en el mapa de la red de correlación (Figura 4). Este fenómeno también se observó en un estudio anterior que mostró biotransformación de isoflavonas de glucósido en agliconas y patrones crecientes en la actividad antioxidante según el tiempo de mentación en soja fermentada con. cristatus [311.

RAO tiene un nivel más alto de actividad de a-glucosidasa que escinde los enlaces a-glucosídicos y autogenera un mayor contenido de glucosa. Además del hecho de que la glucosa es la principal fuente de carbono para los hongos, en RAC, el nivel de glucosa disminuyó después de la fermentación porque se usó para la síntesis de metabolitos secundarios como los derivados de auroglaucina, que son compuestos de pigmento distintivos producidos por A. cristatus, y no por A. orizne Estudios previos han informado que los derivados de auroglaucina tienen actividad en DPPH y se supone que son compuestos antioxidantes potenciales [32]. Además, la pared celular del arroz colapsada podría permitir que las enzimas penetren en las partes más internas del arroz [24]. Por lo tanto, más y más metabolitos podrían extraerse libremente sin interrupción de la pared exterior del arroz.

En el mapa de la red de correlación entre las bioactividades y los metabolitos de RAO y RAC (Figura 4), las tendencias comunes fueron que los flavonoides, los ácidos orgánicos, los derivados del azúcar y los ácidos grasos se sugirieron como posibles contribuyentes a las bioactividades. Los flavonoides y los ácidos fenólicos son antioxidantes reconocidos y tienen muchas ventajas con respecto a varias funciones. Debido a su capacidad para aliviar el estrés oxidativo, se utilizan para mejorar la calidad de los alimentos y mejorar el envejecimiento de la piel [33]. Además, un estudio anterior informó que los ácidos grasos y los antioxidantes podrían crear un efecto sinérgico para la prevención y el control del envejecimiento de la piel [34].

Por otro lado, los derivados de auroglaucina y lisofosfolípidos sirven como contribuyentes adicionales a los metabolitos en RAC [35]. Los derivados de auroglaucina tienen actividades antioxidantes, como se indicó anteriormente, y por lo tanto, asumimos que tienen el potencial de terminar las reacciones en cadena de los radicales libres para aliviar el estrés de la piel. Yahagui et al. demostraron que los lisofosfolípidos podrían mantener la hidratación de la piel al mejorar la expresión de factores asociados con la barrera cutánea y las funciones de hidratación en la piel [36]. La hidratación es un factor vital para una piel sana porque la sequedad induce un deterioro de la piel que se caracteriza por aspereza, piel escamosa y arrugas finas [37,38]. Estimamos que la auroglaucina y los lisofosfolípidos tienen mejores efectos antienvejecimiento de la piel en la etapa final de fermentación en RAC que en RAO. Zhao et al. demostró que el té de ladrillo Fuzhuan, que contiene el hongo dominante A. cristatus, puede inhibir el fotoenvejecimiento mediante la extinción de ROS y la activación de cascadas de señalización de Nrf2 [21]. Por lo tanto, asumimos que RAC ofrece un mayor potencial antienvejecimiento que RAO al actuar a través de rutas indirectas, como establecer mejores condiciones para la piel para una abundante humedad yaliviar el estrés de los radicales libres.

En general, creemos que los ácidos grasos mejorados, los ácidos fenólicos, los flavonoides, los lisofosfolípidos y las hidroquinonas pueden aumentar las actividades antioxidantes y mejorar la expresión de ARN de elastina y colágeno, así como suprimir la expresión de ARN de MMP-1, al final de fermentación. Estos compuestos exhibieron diferentes patrones de cambio en los metabolitos según el hongo del inóculo y afectaron varias bioactividades. Este estudio aclaró la diferencia en el metabolismo general entre diferentes especies del mismo género Aspergillus mediante el uso de un enfoque metabolómico. Además, diferentes actividades enzimáticas influyeron en la producción de diferentes metabolitos e indujeron diferentes bioactividades en RAO y RAC.

4. Materiales y Métodos

4.1. Sustancias químicas y reactivos

4.2. Preparación y extracción de muestras

Los mohos koji A. oryzae KCCM 11372 (Centro de Cultura Coreana de Microorganismos, KCCM; República de Corea) y A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF del centro Cosmax BTI R&I; Seongnam, Corea) se usaron para la fermentación de arroz y se inocularon por separado. . Cada microorganismo se mantuvo en agar extracto de malta (extracto de malta, 20 g; glucosa, 20 g; peptona, 1 g; agar, 20 g/L) a 28 ◦C. El bioproceso de los pasos de fermentación para la producción de koji se adaptó de Lee et al. [11]. Las muestras de arroz koji fermentadas con A. oryzae y A. cristatus se recolectaron cada 2 días (desde el día 0 hasta el día 8) y se almacenaron en condiciones de ultracongelación (−80 ◦C) hasta su posterior análisis. Todas las muestras se prepararon con dos réplicas biológicas.

El método de extracción de la muestra de arroz koji se adaptó de Lee et al. con ligeras modificaciones [11]. Brevemente, las muestras de koji de arroz liofilizado pulverizado (5 g) se extrajeron agregando etanol acuoso al 80 por ciento (40 ml) y agitando en un agitador orbital (200 rpm durante 24 h) a temperatura ambiente. Tras centrifugar las muestras a 10,000 rpm durante 5 min a 4 ◦C, los sobrenadantes se filtraron con un filtro Millex GP de 0,22 µm (Merck Millipore, Billerica, MA, EE. UU.). Los extractos de muestra filtrados se secaron utilizando un concentrador de vacío rápido (Hanil, Seúl, Corea) y se midió el peso seco para evaluar el rendimiento de la extracción.

4.3. Análisis GC-TOF-MS

Los pasos de derivatización de las muestras extraídas de koji de arroz fueron descritos por Lee et al. [11]. El análisis GC-TOF-MS se realizó en un sistema GC Agilent 7890A (Santa Clara, CA, EE. UU.) con un Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, EE. UU.). El gas portador (helio) se utilizó con un RTx-5MS (30 m de longitud × 0,25 mm de diámetro interior, J&W Scientific, Folsom, CA, EE. UU.) a un caudal constante de 1,5 ml/min. Las temperaturas del inyector y de la fuente de iones se mantuvieron a 250 y 230 ◦C, respectivamente. La temperatura del horno se mantuvo a 75 ◦C durante 2 min y luego se aumentó a 300 ◦C a 15 ◦C/min, que se mantuvo durante 3 min. Luego, se inyectó 1 µL de la muestra con un rango de exploración de masas de m/z 50–800. Todos los análisis de muestras se realizaron con tres réplicas analíticas.

4.4. Análisis UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS

Las muestras de koji de arroz extraídas se analizaron en busca de metabolitos secundarios mediante cromatografía líquida de ultra alta resolución, espectrometría de masas en tándem cuadrupolo orbitrap de trampa lineal (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) utilizando los protocolos descritos por Kwon et al. [39]. Cada muestra se separó utilizando una columna Phenomenex KINETEX® C18 (tamaño de partícula de 100 mm 2,1 mm, 1,7 m; Torrance, CA, EE. UU.). El espectro de masas y el rango de matriz de fotodiodos en los modos de iones positivos y negativos se ajustaron para m/z 100-1000 y 200-600 nm, respectivamente.

4.5. Procesamiento de Datos y Análisis Estadístico

Los datos sin procesar de GC–TOF–MS y UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS se transformaron a formato netCDF (*.cdf) utilizando el software Leco ChromaTOF y Thermo Xcalibur, respectivamente. Los respectivos archivos netos CDF (*.cdf) se sometieron al procesamiento de datos mediado por software MetAlign (consultado el 13 de julio 2021)) utilizando los protocolos descritos por Lee et al. [11,24]. Los datos de espectrometría de masas, que representan la masa de pico adecuada (m/z), los tiempos de retención (min) y la información del área de pico como variables, se evaluaron con el software SIMCA-P plus 12.0 (Umetrics, Umea, Suecia) para el análisis estadístico multivariado. Antes del análisis de componentes principales (PCA), el análisis discriminante de mínimos cuadrados parciales (PLS-DA) y el análisis discriminante de mínimos cuadrados parciales ortogonales (OPLS-DA), los conjuntos de datos se transformaron logarítmicamente y la varianza de la unidad se escaló para comparar el arroz koji fermentado con diferentes hongos. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, EE. UU.) se utilizó para probar diferencias significativas (valor p de <0.05) mediante análisis de varianza unidireccional y para calcular los valores del coeficiente de correlación. para un mapa de correlación. El mapa de la red de correlación entre los metabolitos que tienen un valor del coeficiente de correlación de Pearson superior a 0,5 y las bioactividades se construyó con el software Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (consultado el 13 de julio de 2021)). La identificación de los metabolitos tentativos se llevó a cabo comparando los pesos moleculares y la composición molecular, el tiempo de retención, la masa del fragmento

patrones y absorbancia de los datos ultravioleta (UV) de la literatura y de nuestra biblioteca interna

4.6. Determinación de actividades enzimáticas

Se realizaron ensayos de actividad enzimática para -amilasa, -glucosidasa y -glucosidasa de acuerdo con estudios previos [25,40,41]. Se extrajo una cantidad de 10 g de cada muestra de arroz koji en 90 mL de agua mediante agitación en un agitador orbital a las 120 pm y 25 ◦C durante 1 h. Después de filtrar las muestras, los sobrenadantes se usaron para evaluar las actividades enzimáticas.

4.7. Determinación de Actividades Antioxidantes y Contenidos de Fenólicos y Flavonoides Totales

Para determinar la actividad antioxidante de las muestras de arroz koji, se realizaron ensayos de ABTS, DPPH, poder antioxidante reductor férrico (FRAP), contenido fenólico total (TPC) y contenido total de flavonoides (TFC) por triplicado.

Los ensayos ABTS y FRAP se realizaron utilizando el método descrito por Lee et al. [24]. En resumen, la solución madre de ABTS diluida con agua destilada para lograr una absorbancia final de 0.7 ± 0.02 a 750 nm (180 µL) fue añadido a cada extracto de muestra (20 µL) en una placa de 96-pocillos. Se dejó que la reacción tuviera lugar durante 6 min en la oscuridad a temperatura ambiente. La absorbancia se midió a 750 nm utilizando un espectrofotómetro. Para el ensayo FRAP, una mezcla de tampón de acetato 300 mM (pH 3,6), cloruro de hierro (III) 20 mM y solución de 2,4,6-tripiridil-S-triazina (TPTZ) 10 mM en HCl 40 mM (10:1:1, v/v/v) fueron preparados. La muestra (10 µL) se mezcló con 300 µL de reactivo FRAP y se incubó a temperatura ambiente durante 6 min. La absorbancia se midió a 570 nm. El ensayo DPPH se llevó a cabo siguiendo el método adaptado de Won et al. [42], donde se mezclaron 180 µL de la solución madre de DPPH (0,2 mM en etanol) con 20 µL de koji de arroz con dos extractos fúngicos diferentes en 96-placas de pocillos y se dejó reaccionar durante 20 min a temperatura ambiente en la oscuridad. La absorbancia de radicales libres por DPPH se midió a 515 nm. Los resultados de ABTS, FRAP y DPPH se representan como la concentración (mM) de la capacidad antioxidante equivalente de Trolox (TEAC) por miligramo de koji. Las curvas de concentración estándar oscilaron entre 0,0078 mM y 1 mM de TEAC.

Para los ensayos TFC y TPC, un método utilizado por Lee et al. [25] fue seguido. Para el ensayo TFC, se mezclaron 20 µL de cada muestra de koji de arroz con 20 µL de NaOH 1 N y 180 µL de dietilenglicol al 90 por ciento en una 96-placa de pocillos. Después de la incubación de la mezcla durante 60 min a temperatura ambiente, se midió la absorbancia a 405 nm. TFC se presenta como la concentración equivalente de naringina (NE) (mM) por miligramo de koji. La curva de concentración estándar fue lineal entre 0,0027 y 0,3445 mM de NE. Para el análisis del ensayo TPC, se incubaron 20 µL de cada muestra con 100 µL de reactivo de Folin-Ciocalteu 0,2 N en 96-placas de pocillos a temperatura ambiente durante 6 min. Luego, se añadieron a la mezcla 80 µL de solución de carbonato de sodio (Na2CO3) al 7,5 por ciento y se dejó reaccionar durante 60 min a temperatura ambiente. Finalmente, se evaluó la absorbancia a 750 nm. Los resultados se indican como concentraciones equivalentes de ácido gálico (GE) (mM) por miligramo de koji en un rango de concentración estándar de 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8. Culturas celulares

4.9. Reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real

Para aislar y cuantificar el ARN total de los sedimentos celulares, se utilizó el reactivo Trizol y el análisis se realizó con un espectrofotómetro. La síntesis de ADNc se llevó a cabo en un volumen de reacción total de 20 µL; la mezcla de reacción consistió en 2 µg de ARN total, oligo (dT) y premezcla de transcripción inversa en las siguientes condiciones de reacción: 45 ◦C durante 45 min, seguido de 95 ◦C durante 5 min. Se utilizó RT-PCR para la cuantificación de la expresión génica y los resultados se analizaron posteriormente con el software del sistema StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, CA, EE. UU.). Las amplificaciones de RT-PCR se realizaron utilizando SYBR Green PCR Master Mix con ROX premezclado (Applied Biosystems, Foster City, CA, EE. UU.) y cebadores (Bioneer, Daejeon, Corea) en un instrumento ABI 7300 siguiendo el protocolo del fabricante. Las condiciones de reacción fueron las siguientes: inicio a 95 ◦C durante 10 min, seguido de condiciones de ciclado de 95 ◦C durante 15 s, 60 ◦C durante 30 s y 72 ◦C durante 30 s durante 40 ciclos. -Actina se utilizó como control interno.

En conclusión, el arroz koji mostró la producción de diferentes metabolitos y bioactividades según las diferentes especies de Aspergillus utilizadas. Los niveles más altos deflavonoidesy derivados de auroglaucina en RAC resultó en mayoractividad antioxidanteque en RAO. Además, los efectos sinérgicos de los ácidos grasos ycompuestos antioxidantesencontrados en ambos koji se asociaron con la expresión de ARN delfactor antienvejecimiento de la piel. Los derivados de auroglaucina y los lisofosfolípidos que se encuentran en RAC también fueron candidatos que podrían estar asociados conExpresión de ARN de factores antienvejecimiento de la piel.. Por lo tanto, aunque el arroz koji se fermenta utilizando miembros del mismo género (Aspergillus), existen diferencias significativas en las actividades enzimáticas y los metabolitos de las diferentes especies, y afectanbioactividadescomoantioxidanteyactividades antienvejecimiento. Por lo tanto, este estudio proporciona una visión integral, así como la lógica para una elección racional de los microbios de inoculación, con respecto a

metabolómica, para mejorar la calidad de la producción comercial de koji.

Materiales complementarios:Los siguientes están disponibles en línea en la Figura S1: El gráfico de puntuación de PLS-DA (A,B) y el gráfico de puntuación de OPLS-DA (C) para arrozkojifermentado conAspergillus cristatusoA. oryzaese obtuvieron de UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) y GC–TOF–MS (B). Tabla S1: Lista de metabolitos significativamente distintos del arrozkojicon diferenteAspergillus spp. durante la fermentación identificada por UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, Tabla S2: Lista de metabolitos significativamente distintos del arrozkojicon diferenteAspergillus spp. durante la fermentación identificada por GC-TOF-MS, Figura S2: Mapa de correlación de bioactividades (efecto de células de la piel y actividad antioxidante) y arrozkojifermentado conAspergillus cristatusoA. oryzaemetabolitos según el coeficiente de correlación de Pearson. Cada cuadrado indica los valores del coeficiente de correlación de Pearson (r).

Contribuciones de autor:Conceptualización, CL y SL; metodología, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) y JR; validación, HL, SL y SK (Seoyeon Kyung); análisis formal, HL y SK (Seoyeon Kyung); investigación, HL y SL; recursos, JR, SK (Seunghyun Kang) y MP; escritura—preparación del borrador original, NS; redacción—revisión y edición, NS y SL; visualización, NS; supervisión, SL y CL; administración del proyecto, SK (Seunghyun Kang), MP y CL; adquisición de financiación, CL Todos los autores han leído y están de acuerdo con el publicadoversión del manuscrito.

Fondos:Este trabajo fue apoyado por el Instituto Coreano de Planificación y Evaluación de Tecnología en Alimentos, Agricultura y Silvicultura (IPET) a través del Programa de I + D de Microbiomas Agrícolas (La Iniciativa Estratégica para Microbiomas en Agricultura y Alimentos), financiado por el Ministerio de Agricultura, Alimentación y Rural. Asuntos Exteriores (MAFRA) (Número de concesión 918011-04-3-HD020). Además, este trabajo fue apoyado por el Instituto Coreano de Planificación y Evaluación de Tecnología en Alimentación, Agricultura, Silvicultura (IPET) a través del Programa de Desarrollo de Tecnología Alimentaria de Alto Valor Agregado, financiado por el Ministerio de Agricultura, Alimentación y Asuntos Rurales (MAFRA) (número de concesión 318027-04-3-HD030)

Declaración de disponibilidad de datos:Los datos presentados en este estudio están disponibles previa solicitud a laAutor correspondiente

Expresiones de gratitud:Esta investigación fue apoyada por el Fondo de Investigación de la Universidad de Konkuk en2020.

Referencias

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Beneficios para la salud de los alimentos fermentados. crítico Rev. ciencia de los alimentos. Nutrición 2019, 59, 506–527. [Referencia cruzada]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimización para la preparación de arroz koji utilizando Aspergillus oryzae CJCM-4 aislado de un meju tradicional coreano. ciencia de la comida Biotecnología. 2012, 21, 129–135. [Referencia cruzada]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Mejora de los perfiles de sabor en el vino de arroz chino mediante la creación de levadura de fermentación con tolerancia superior al etanol y actividad de fermentación. Alimentos Res. En t. 2018, 108, 83–92. [Referencia cruzada] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Efecto del iniciador de koji sobre los metabolitos en la bebida alcohólica japonesa sake elaborada con arroz de sake Koshitanrei. Biosci. Biotecnología. Bioquímica 2020, 84, 1714–1723. [Referencia cruzada]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Un salvado de arroz negro glutinoso de cultivo tailandés local: una fuente de compuestos funcionales en la inmunomodulación, la viabilidad celular y la síntesis de colágeno, y la inhibición de la metaloproteinasa de matriz-2 y-9. Función J. Alimentos 2014, 7, 650–661. [Referencia cruzada]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Parque, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Perfiles de metabolitos y bioactividad del arroz koji fermentado por cepas de Aspergillus. J. Microbiol. Biotecnología. 2012, 22, 100–106. [Referencia cruzada] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oxidantes, antioxidantes y las enfermedades degenerativas del envejecimiento. proc. nacional Academia ciencia EE. UU. 1993, 90, 7915–7922. [Referencia cruzada] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Radicales libres y antioxidantes en funciones fisiológicas normales y enfermedades humanas. En t. J. Bioquímica. Biol celular. 2007, 39, 44–84. [Referencia cruzada]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Estrés oxidativo y enfermedades neurodegenerativas: una revisión de las opciones terapéuticas antioxidantes aguas arriba y aguas abajo. actual Neurofarmaco. 2009, 7, 65–74. [Referencia cruzada]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-O. Actividad antioxidante y compuestos activos del arroz koji fermentado con Aspergillus candidus. Química alimentaria 2003, 83, 49–54. [Referencia cruzada]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; espinilla, HW; Luna, BS; Lee, CH Metabolomas comparativos de resolución temporal para la fermentación de Koji con arroz integral, blanco y embrionario gigante. Química alimentaria 2017, 231, 258–266. [Referencia cruzada] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fátima, A.; Nasab, R. Efectos antienvejecimiento del retinol y el alfahidroxiácido en las fibras de elastina de líneas celulares de fibroblastos dérmicos humanos fotoenvejecidos artificialmente. En t. J. Med Salud Biomédica. Farmacia Ing. 2015, 7, 328.

13. Bola, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, vicepresidente; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; José, JP; Surapaneni, KM La potencia de curación de heridas in vitro del extracto metanólico de hojas de Aristolochia saccata posiblemente esté mediada por su efecto estimulador sobre la expresión de colágeno-1. Heliyon 2019, 5, e01648. [Referencia cruzada] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Influencias del extracto de col rizada rico en carotenoides tomado por vía oral sobre el índice de colágeno I/elastina de la piel. Nutrientes 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG Inhibición de ROS inducida por UV y daño de colágeno por extracto de Phyllanthus emblica en fibroblastos dérmicos humanos normales. J. Cosmet. ciencia 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Matrix metaloproteinasa-1 actividades inhibidoras del extracto de semilla de Morinda citrifolia y sus constituyentes en fibroblastos dérmicos humanos irradiados con UVA. Biol. Farmacia Toro. 2012, 35, 210–215. [Referencia cruzada] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Efecto anti-fotoenvejecimiento del extracto de salvado de arroz fermentado en fibroblastos de piel normales inducidos por UV. EUR. Alimentos Res. Tecnología 2010, 231, 163–169. [Referencia cruzada]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Antioxidantes del arroz: ácidos fenólicos, flavonoides, antocianinas, proantocianidinas, tocoferoles, tocotrienoles, orizanol y ácido fítico. ciencia de la comida Nutrición 2014, 2, 75–104. [Referencia cruzada]

19. Bechman, A.; Phillips, RD; Chen, J. Cambios en la propiedad física seleccionada y la actividad enzimática del koji de arroz y cebada durante la fermentación y el almacenamiento. J. Alimentos. ciencia 2012, 77, M318–M322. [Referencia cruzada]

20. Kang, D.; Suma.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, un hongo probiótico potencial del té de ladrillo Fuzhuan, alivió la obesidad en ratones al modular la microbiota intestinal. Función de alimentos. 2019, 10, 5032–5045. [Referencia cruzada]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Protección del fotoenvejecimiento inducido por UVB mediante el extracto acuoso de té Fuzhuan-Brick a través de la regulación negativa mediada por MAPKs/Nrf2- de MMP-1. Nutrientes 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB Efecto de la fermentación sobre la actividad antioxidante en alimentos de origen vegetal. Química alimentaria 2014, 160, 346–356. [Referencia cruzada] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Detección e identificación en línea de compuestos captadores de radicales libres en Angelica dahurica fermentada con Eurotium cristatum utilizando un sistema HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS. Química alimentaria 2019, 272, 670–678. [Referencia cruzada] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH La metabolómica revela un preprocesamiento óptimo del grano (molienda) para la fermentación del arroz con koji. J. Agric. Química alimentaria 2018, 66, 2694–2703. [Referencia cruzada]

Pregunta por más:

Correo electrónico:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: más 86 15292862950