Determinación del contenido de cinco compuestos en Semen Rehmanniae y establecimiento de su huella digital por HPLC
Sep 27, 2024
Tabla 3 Resultados de la prueba de recuperación (n=6)
| Nombre de la muestra | Cantidad de muestra/mg | Cantidad añadida/mg | Cantidad medida/mg | Recuperación/% | Recuperación promedio/% | RSD/% |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Muestra de terreno D-1 | 3.6711 | 2.1130 | 5.7209 | 97.0 | ||
| Muestra de terreno D-2 | 3.6470 | 2.1130 | 5.7311 | 98.6 | 97.2 | 1.52 |
| Muestra de terreno D-3 | 3.6492 | 2.1130 | 5.7327 | 98.6 | ||
| Muestra de terreno D-4 | 3.6937 | 2.1130 | 5.7316 | 96.4 | ||
| Muestra de terreno D-5 | 3.7274 | 2.1130 | 5.7295 | 94.8 | ||
| Muestra de terreno D-6 | 3.6667 | 2.1130 | 5.7327 | 97.8 | ||
| Muestra de sal n.° 1 | 1.3359 | 1.9050 | 3.2021 | 98.0 | ||
| Muestra de sal n.° 2 | 1.3271 | 1.9050 | 3.1965 | 98.1 | 97.4 | 0.73 |
| Muestra de sal n.° 3 | 1.3279 | 1.9050 | 3.1817 | 97.3 | ||
| Muestra de sal n.° 4 | 1.3441 | 1.9050 | 3.2005 | 97.4 | ||
| Muestra de sal n.° 5 | 1.3563 | 1.9050 | 3.1874 | 96.1 | ||
| Muestra de sal n.° 6 | 1.3343 | 1.9050 | 3.1869 | 97.3 | ||
| Muestra de fruta #1 | 0.1858 | 0.1831 | 0.3654 | 98.1 | ||
| Muestra de fruta #2 | 0.1846 | 0.1831 | 0.3625 | 97.3 | 97.4 | 0.87 |
| Muestra de fruta #3 | 0.1847 | 0.1831 | 0.3627 | 97.1 | ||
| Muestra de fruta #4 | 0.1870 | 0.1831 | 0.3629 | 96.1 | ||
| Muestra de fruta #5 | 0.1887 | 0.1831 | 0.3691 | 98.5 | ||
| Muestra de fruta #6 | 0.1856 | 0.1831 | 0.3639 | 97.4 | ||
| Muestra de carne A-1 | 0.1507 | 0.2043 | 0.3452 | 95.2 | ||
| Muestra de carne A-2 | 0.1497 | 0.2043 | 0.3487 | 97.4 | 96.5 | 0.92 |
| Muestra de carne A-3 | 0.1498 | 0.2043 | 0.3468 | 96.4 | ||
| Muestra de carne A-4 | 0.1516 | 0.2043 | 0.3479 | 96.1 | ||
| Muestra de carne A-5 | 0.1530 | 0.2043 | 0.3494 | 96.1 | ||
| Muestra de carne A-6 | 0.1505 | 0.2043 | 0.3498 | 97.6 | ||
| Muestra de cabello #1 | 0.4018 | 0.3583 | 0.7557 | 98.8 | ||
| Muestra de cabello #2 | 0.3991 | 0.3583 | 0.7563 | 99.7 | 98.6 | 0.97 |
| Muestra de cabello #3 | 0.4042 | 0.3583 | 0.7549 | 99.2 | ||
| Muestra de cabello #4 | 0.3994 | 0.3583 | 0.7551 | 97.9 | ||
| Muestra de cabello #5 | 0.4079 | 0.3583 | 0.7559 | 97.1 | ||
| Muestra de cabello #6 | 0.4013 | 0.3583 | 0.7565 | 99.1 |
2.4 Determinación de muestras
Los seis lotes de Rehmannia recolectados se prepararon según el método indicado en "2.2.2" y se tomaron muestras y se determinaron según las condiciones cromatográficas indicadas en "2.1". Los resultados de la determinación del contenido se muestran en la Tabla 4. Los resultados muestran que entre los cinco componentes, el contenido de glucósido D de rehmannia es el más alto, oscilando entre 0.460% y {{1 0}}.730%; el contenido de glucósido de leonuri ocupa el segundo lugar, oscilando entre 0,100% y 0,270%, y el contenido de los dos componentes en muestras de diferentes áreas de producción no es significativamente diferente. En la muestra SX1, a excepción del equinacósido, los contenidos de los otros cuatro componentes son significativamente mayores que los de otros lotes de muestras; los contenidos de echinacósido, cistanquésido A y verbascósido en Rehmannia glutinosa de diferentes áreas de producción son bastante diferentes e irregulares.

HIERBA DE CISTANCHE CONBUENA CONSISTENCIA DE CALIDAD
2.5 Establecimiento y evaluación de similitud de la huella digital HPLC de Rehmannia glutinosa
Los cromatogramas y los datos de la determinación del contenido de múltiples componentes en Rehmannia glutinosa se importaron al software "Sistema de evaluación de similitud de huellas dactilares cromatográficas de medicina herbaria china (2012 edición)" y se seleccionó el cromatograma de la muestra de prueba SX1. como espectro de referencia. El ancho de la ventana de tiempo se estableció en 0.10 min y se utilizó el método de la mediana para generar espectros superpuestos y espectros de referencia. Se identificaron un total de 23 picos comunes (ver Figura 3). La similitud entre las huellas dactilares de la muestra de Rehmannia glutinosa y la referencia fue de 0,904~0,950, lo que indica que las muestras de Rehmannia glutinosa de diferentes áreas de producción y entre Rehmannia glutinosa cruda y Rehmannia glutinosa cocida eran similares y tenían una consistencia de buena calidad.
Tabla 4 Resultados de la determinación del contenido de 5 componentes en Semen Rehmanniae/%


13. rehmanniosido D; 17. leonurida; 19. echinacósido; 20. castanósido A; 21. actósido
Figura 3 Cromatogramas de HPLC superpuestos de 6 lotes de Semen Rehmanniae (SX1-SX4, HN1, HN2) y referencia (R)
3 Discusión
3.1 Selección de condiciones cromatográficas.
En este estudio se investigaron cuatro sistemas de fase móvil: acetonitrilo-agua, acetonitrilo-0.solución de ácido fórmico al 1%, metanol-agua y metanol-0.solución de ácido fórmico al 1%. Los resultados mostraron que los cinco componentes tenían buenos efectos de separación en el sistema de acetonitrilo; En comparación con el sistema de fase móvil acetonitrilo-agua, los picos de rehmannia glutinosa y glucósidos de agripalma en la fase móvil de solución de ácido fórmico al 1% de acetonitrilo-0 eran más estrechos y tenían una buena simetría de pico. Al mismo tiempo, debido a la diferente absorción ultravioleta de los cinco componentes, el contenido de los componentes varía mucho. Para determinar con mayor precisión el contenido de cada componente y garantizar que la intensidad de absorción de los cinco componentes se distribuya uniformemente en el mismo cromatograma, la absorción ultravioleta deglucósido D de rehmannia, se analizó glucósido de agripalma, equinacósido, cistanquésido A y verbascósido, y se seleccionó la determinación de longitud de onda variable, es decir, 0-24 min, el primer glucósido de rehmannia separado se determinó a 203 nm, y 24-40 min, el echinacósido, el cistanquésido A y el verbascósido separados se determinaron a 330 nm. Además, este estudio también investigó los efectos de extracción del metanol, la solución de metanol al 70 %, la solución de metanol al 50 % y la solución de acetonitrilo al 50 % como disolventes de extracción. Los resultados mostraron que una solución de metanol al 70 % como disolvente de extracción puede disolver mejor los componentes a analizar y la muestra extraída tiene menos impurezas. Por lo tanto, este estudio seleccionó metanol al 70% como solvente de extracción, acetonitrilo-0.Solución de ácido fórmico al 1% como sistema de fase móvil y utilizó longitud de onda variable para determinar el contenido de los cinco componentes en Rehmannia.

3.2 Análisis de los resultados de la determinación de muestras.
De los resultados de la determinación se desprende que después de la vaporización, excepto por un ligero aumento en el contenido de echinacósido, los contenidos de los otros cuatro componentes se redujeron significativamente, especialmente el contenido de leonurisida y cistanchesida A; el contenido de rehmannia glucósido D y cistancheside A en Rehmannia glutinosa de la misma zona de producción fue ligeramente diferente, y el contenido de leonurisida, echinacósido y verbascósido fue significativamente diferente; el contenido de echinacósido en Rehmannia glutinosa del área de producción de Henan fue significativamente mayor que el de las muestras del área de producción de Shanxi, y el contenido de los otros cuatro componentes fue ligeramente diferente. Al mismo tiempo, según la huella digital de HPLC establecida en este estudio, la similitud entre los 6 lotes de muestras de Rehmannia y la huella digital de control fue 0.904~0,950, lo que indica que la sustancia química principal Los componentes de los 6 lotes de muestras de Rehmannia antes y después del procesamiento fueron muy consistentes.
En resumen, el método de determinación del contenido y la huella digital de HPLC establecidos en este estudio son precisos, confiables y tienen buena especificidad. Se pueden utilizar para caracterizar los cambios en los componentes y el grado de procesamiento de Rehmannia glutinosa antes y después del procesamiento, y brindar soporte técnico para el control de calidad de Rehmannia glutinosa. Sin embargo, este estudio tiene las desventajas de tener lotes de muestra pequeños y una cobertura incompleta de las áreas de producción, lo que requiere más análisis y verificación.

Referencias
[1] Comité de Farmacopea China. Farmacopea de la República Popular China: Volumen 1 [S]. Beijing: Prensa de tecnología y ciencia médica de China, 2020: 129-130.
[2] Xu Jun, Fu Zhetong. Investigación sobre la evolución histórica de los nombres de Rehmannia glutinosa procesada y el estudio de su eficacia [J]. Medicina de patentes china, 2017, 39 (9): 1913-1916.
[3] Zhu Jue, Zhu Xiangmei, Shi Yuhe, et al. Avances de la investigación sobre Rehmannia glutinosa y análisis de predicción de sus marcadores de calidad [J]. Medicina de patentes china, 2022, 45 (2): 1273-1281.
[4] Chen Jinpeng, Zhang Kexia, Liu Yi, et al. Avances de la investigación sobre la composición química y efectos farmacológicos de Rehmannia glutinosa [J]. Medicina herbaria china, 2022, 52 (6): 1772-1784.
[5] Li Hongwei, Meng Xiangle. Avances en la investigación sobre los componentes químicos y efectos farmacológicos de Rehmannia glutinosa[J].
Investigación de evaluación de medicamentos, 2015, 38(2): 218-228.
[6] Zhang Boyong, Jiang Zhenzuo, Wang Yuefei, et al. Análisis de componentes químicos de Rehmannia glutinosa fresca, Rehmannia glutinosa cruda y Rehmannia glutinosa cocida por UPLC/ESI-Q-TOF MS[J]. Medicina de patentes china, 2016, 38(5): 1104-1108.
[7] Zhang Lixian, Wei Yue, Li Feifei y otros. Reconocimiento de patrones de huellas dactilares y determinación del contenido de múltiples componentes de diferentes productos procesados de Rehmannia glutinosa [J]. Ciencias Agrícolas de Hubei, 2023, 62(9): 135-141.
[8] Chen Jinpeng, Zhang Kexia, Liu Yi, et al. Avances en la investigación sobre los componentes químicos y efectos farmacológicos de Rehmannia glutinosa[J]. Medicina herbaria china, 2021, 52(6): 1772-1784.
[9] Tao Yi, Jiang Yanhui, Tang Kejian, et al. Estudio comparativo de componentes químicos de Rehmannia glutinosa antes y después del procesamiento por UHPLC-Q-TOF/MS[J]. Nuevas medicinas chinas y farmacología clínica, 2016, 27(1): 102-106.
[10] Xu Zhuo, Dai Xinxin, Su Shulan, et al. Acumulación dinámica de componentes de nucleósidos y aminoácidos en Rehmannia glutinosa basada en UPLC-TQ-MS[J]. Medicina herbaria china, 2021, 52(23): 7323-7330.
[11] Li Yujiao. Estudio sobre la tecnología de procesamiento y el mecanismo de "nueve cocciones al vapor y nueve exposiciones" de Rehmannia glutinosa[D]. Jinan: Universidad de Shandong, 2023.
[12] Wang Yue, Zhou Qiao, Zhang Xuelan, et al. HPLC Determinación simultánea del contenido de ocho componentes en Rehmannia glutinosa y sus diferentes productos procesados mediante análisis de huellas dactilares UPLC y determinación del contenido de componentes multiíndice [J]. Materiales medicinales chinos, 2021, 44 (7): 64-68.
[13] Guo Xiaokai, Xue Shujuan, Chen Suiqing. Evaluación de la calidad de Rehmannia glutinosa basada en la huella digital UPLC y la determinación del contenido de componentes de múltiples índices [J]. Materiales medicinales chinos, 2021, 44 (4): 917-923.






