Aplicación de quercetina para la carpa común (Cyprinus carpio): I. Efectos sobre el rendimiento del crecimiento, la inmunidad humoral, el estado antioxidante, los genes relacionados con la inmunidad y la resistencia contra el estrés por calor

Este estudio se realizó para evaluar el efecto de diferentes niveles de quercetina en el rendimiento del crecimiento, las respuestas inmunitarias, el estado antioxidante, los factores bioquímicos séricos y las respuestas al estrés por altas temperaturas en la carpa común (Cyprinus carpio). Un total de 216 carpas comunes con un peso promedio de 27:21 ± 53 g se dividieron en 12 tanques (cuatro tratamientos × tres repeticiones) y se alimentaron con 0 mg/kg de quercetina (T0), 200 mg/kg de quercetina (T1), 400 mg/kg de quercetina (T2) y 600 mg/kg de quercetina (T3) durante 60 días. Hubo diferencias significativas en el rendimiento del crecimiento, y el peso corporal final (FBW), la ganancia de peso (WG), la tasa de crecimiento específica (SGR) y el consumo de alimento (FI) más altos se observaron en T2 y T3 (P < 0:05) .

Existe una estrecha relación entre los factores bioquímicos séricos y la inmunidad. Los factores bioquímicos séricos son los principales metabolitos en el cuerpo humano, y el aumento o disminución de sus niveles afectará la inmunidad del cuerpo humano.

Los factores bioquímicos séricos incluyen proteínas, carbohidratos, grasas y otras sustancias, que forman una red metabólica compleja en el cuerpo humano. Cuando el cuerpo humano está en un estado saludable, los niveles de factores bioquímicos séricos estarán en un estado equilibrado, lo que ayuda a mantener el estado saludable del cuerpo humano.

Cuando el cuerpo humano sufre una enfermedad o estrés, los niveles de factores bioquímicos séricos cambiarán, lo que reducirá la inmunidad. Por ejemplo, cuando los niveles de proteína y amilasa en el suero disminuyen, la inmunidad del cuerpo se debilitará significativamente, lo que aumentará la susceptibilidad a las enfermedades.

Por lo tanto, es muy importante mantener el equilibrio de los factores bioquímicos séricos, lo que se puede lograr mediante cambios en el estilo de vida. Por ejemplo, hacer más ejercicio, comer menos alimentos ricos en grasas, sal y azúcar, y comer más frutas y verduras frescas puede ayudar al cuerpo a mantener niveles saludables de factores bioquímicos séricos, mejorando así la inmunidad.

En resumen, los factores bioquímicos séricos están estrechamente relacionados con la inmunidad humana y juntos constituyen la red metabólica del cuerpo. Debemos mantener un estilo de vida saludable y mantener los factores bioquímicos del suero en equilibrio para proteger nuestra salud. Desde este punto de vista, necesitamos mejorar nuestra inmunidad. Cistanche puede mejorar significativamente la inmunidad porque Cistanche también tiene efectos antivirus y anticancerígenos, que pueden fortalecer la capacidad del sistema inmunológico para combatir y mejorar la inmunidad del cuerpo.

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Diferentes niveles de quercetina aumentaron significativamente la actividad de la vía del complemento (ACH50) y la actividad de la lisozima antes y después del estrés por calor (P < 0:05). La catalasa (CAT), la glutatión peroxidasa (GPx) y el malondialdehído (MDA) aumentaron significativamente en los peces expuestos al estrés por calor, pero los peces alimentados con una dieta suplementada con quercetina mostraron los niveles más bajos tanto antes como después del estrés por calor (P < {{ 7}}:05). Los niveles de superóxido dismutasa (SOD) aumentaron significativamente en las dietas alimentadas con peces suplementadas con quercetina en ambas fases (P < 0:05). Los diferentes niveles de quercetina dieron lugar a una disminución significativa de la alanina aminotransferasa (ALT) y la aspartato aminotransferasa (AST) antes y después de la prueba de desafío (P < 0:05).

Los niveles de glucosa y cortisol fueron significativamente más altos en el grupo control en comparación con los otros tratamientos en ambas fases (P < {{0}}:05). La expresión de glutatión peroxidasa (GPx) y lisozima aumentó notablemente en peces alimentados con dietas suplementadas con quercetina (P < 0:05). No se observaron efectos marcados para la hormona del crecimiento (GR) y la interleucina-8 (IL8) (P > 0:05). En conclusión, los suplementos dietéticos de quercetina (400- 600 mg/kg de quercetina) mejoraron el rendimiento del crecimiento, la inmunidad y el estado antioxidante y aumentaron la tolerancia al estrés por calor.

1. Introducción

La acuicultura se está desarrollando progresivamente en paralelo con el crecimiento de la población mundial. Sin embargo, las actividades de producción intensiva, los cambios repentinos de temperatura, el clima anormal y otras condiciones ambientales como tales causan estrés a los peces y dificultan la calidad y el rendimiento de la producción al desencadenar una depresión inmunológica y un aumento de las epidemias infecciosas. Uno de los elementos ambientales más importantes en la industria de la acuicultura es la temperatura, ya que puede afectar el metabolismo, el comportamiento alimentario, el crecimiento, la supervivencia y la resistencia a enfermedades de los animales acuáticos [1–3]. Los cambios de temperatura disminuyeron el crecimiento, la eficiencia alimenticia, la función fisiológica, la respuesta inmune y el estado oxidativo en los órganos de los animales acuáticos ([3–5].

Para combatir tales desafíos, la participación de aditivos alimentarios funcionales en la dieta de los peces es respetuosa con el medio ambiente y eficiente. Estos aditivos pueden aumentar potencialmente el crecimiento y el desempeño reproductivo de los peces, la calidad del filete y la resistencia a enfermedades y condiciones ambientales.

Los polifenoles y los aditivos ricos en polifenoles se agregan a los alimentos para animales acuáticos para aumentar el rendimiento del crecimiento, la respuesta inmune, el estado antioxidante y la resistencia a las enfermedades [6, 7]. Al ser considerada la principal clase de flavonoides (flavonoles), una familia de compuestos polifenólicos, la quercetina abunda en muchas frutas y verduras, como el té, las cebollas, las manzanas, las fresas, el repollo, las nueces y la coliflor.

Es ampliamente reconocido que la quercetina inhibe la producción de biopelículas de muchas bacterias patógenas como Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus mutantes, Escherichia coli y Pseudomonas aeruginosa con características como la supresión de las vías de detección de quórum, la inhibición de las bombas de expulsión, la interrupción o alteración de la membrana plasmática y bloqueando la síntesis de ácidos nucleicos [8]. Además, la quercetina tiene muchas propiedades beneficiosas, como anticancerígena [9], antioxidante y antiinflamatoria [10].

Hallazgos anteriores indicaron que la quercetina en la dieta tuvo un efecto positivo en el estado antioxidante [11, 12], el rendimiento del crecimiento [13, 14], la calidad de la carne [15], los parámetros hematológicos e inmunológicos [16], la resistencia a enfermedades [17, 18], y propiedades de defensa del iridovirus del mero [19-21]. Algunas investigaciones demostraron que la quercetina en la dieta mejoró el rendimiento de crecimiento del pollo [22] y aumentó las puntuaciones sensoriales como el color, la textura y la aceptabilidad general del lomo de cabra [23]. En animales acuáticos, la quercetina por encima de 400 mg/kg mejoró el crecimiento de la tilapia (Oreochromis spp.) [24].

Estudios previos han informado que los suplementos dietéticos a base de hierbas reducen los marcadores de estrés en algunas especies de peces y/o mariscos como Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] y Oncorhynchus mykiss [27] sometidos a altas temperaturas. Sin embargo, no hay información disponible sobre el efecto de la quercetina en la dieta en animales acuáticos expuestos a estrés por altas temperaturas. Por lo tanto, el presente estudio se llevó a cabo para comparar el efecto de la suplementación con quercetina en la dieta sobre el rendimiento del crecimiento, algunos parámetros inmunológicos, el estado antioxidante, algunas variables bioquímicas del suero y las respuestas al estrés por alta temperatura en los peces.

2. Material y Métodos

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>Se formularon niveles de pureza del 95 por ciento, Sigma Chemical Co., EE. UU. (Tabla 1). Brevemente, los ingredientes secos se mezclaron completamente. Después de difundir los ingredientes líquidos en la mezcla, se añadió agua desionizada (250 ml por kg de dieta). La mezcla preparada se extruyó en una picadora de carne eléctrica (MG1400R, Pars Khazar, Teherán, Irán) y los alimentos se pasaron en función del tamaño de la boca del pez (1 mm de diámetro). Finalmente, se prepararon cuatro dietas experimentales que incluían 0 mg/kg de quercetina (T0), 200 mg/kg de quercetina (T1), 400 mg/kg de quercetina (T2) y 600 mg/kg de quercetina (T3). Los gránulos se secaron en un armario de secado y luego se almacenaron a 4 grados C hasta su uso. La composición química, la humedad, la proteína cruda, los lípidos y el contenido de cenizas se confirmaron siguiendo los métodos estándar [28].

2.2. Peces y condiciones experimentales. Se obtuvo un total de 216 carpas comunes con un peso promedio de 27:21 ± 53 g de una piscifactoría privada y se trasladaron a la sala de investigación de la Universidad de Gonbad (Gonbad, Irán). Se almacenaron en 12 tanques con una densidad de 18 peces por tanque y se aclimataron a las condiciones experimentales durante 10 días. Durante el período de aclimatación, la carpa común se alimentó con una dieta basal dos veces al día. Al final del tiempo de adaptación, estos tanques se asignaron aleatoriamente a 4 tratamientos con 3 repeticiones, y los peces se alimentaron a una tasa del 2,5 % del peso corporal dos veces al día durante 60 días. Los desechos de peces y la mitad del agua del acuario se extrajeron diariamente y se reemplazaron con agua bien aireada. Los parámetros de calidad del agua, como la temperatura, el oxígeno disuelto y el pH, se midieron regularmente y se mantuvieron en los niveles estándar para la carpa común (temperatura 24:1±0:5C, oxígeno disuelto 6:8±0:2mg/l, pH7 :36 ± 0:1, y fotoperiodo 12D: 12L) [29].

2.3. Biometría y Recogida de Muestras de Sangre. Después de un período de ayuno de 24 h, todos los peces de cada tanque fueron anestesiados con 200 mg l-1 de polvo de clavo y se registró el peso de cada pez [30]. El rendimiento del crecimiento y la tasa de supervivencia se calcularon utilizando una fórmula común [7]. Se seleccionaron aleatoriamente tres peces por tanque (9 peces por tratamiento) para recolectar la muestra de sangre. Se recogieron muestras de sangre a través de la vena caudal de cada pez utilizando una jeringa estéril y se introdujeron en tubos. Los tubos se centrifugaron (5000 rpm durante 10 min a 4 grados C) [29], y luego, el sobrenadante se separó y almacenó a -20 grados C.

2.4. Desafío de calor. Después de 60 días de alimentación, se administró un desafío de estrés por calor de acuerdo con Dawood et al. [30] Estudio por triplicado. Primero, se detuvo la alimentación durante la prueba y siete peces hambrientos por tanque (21 peces por tratamiento) se mantuvieron en una condición similar con una temperatura alta (32 grados C) durante 48 horas para el estrés por calor. Se usaron calentadores de acuario para aumentar la temperatura hasta 32 grados C, y la temperatura del agua se controló con frecuencia mediante medidores multiparamétricos portátiles (YSI, China).

2.5. Muestreo de sangre y tejidos. Después de la prueba de desafío, todos los peces de cada tanque se anestesiaron con 200 mg l-1 de polvo de clavo y se seleccionaron tres peces por tanque (9 peces por tratamiento) para recolectar muestras de sangre. Se recogieron muestras de sangre a través de la vena caudal de cada pez utilizando una jeringa estéril y se introdujeron en tubos. Los tubos se centrifugaron (5000 rpm durante 10 min a 4 grados C) [29], y luego, el sobrenadante se separó y almacenó a -20 grados C.

2.6. Ensayo de bioquímica. Antes y después de las pruebas de desafío, se analizaron la glucosa, la alanina aminotransferasa (ALT), la aspartato aminotransferasa (AST), la catalasa (CAT), la glutatión peroxidasa (GPx), el malondialdehído (MDA) y la superóxido dismutasa (SOD) utilizando kits comerciales (Pars Azmoon , Irán). Se analizó la actividad de la lisozima sérica utilizando el método de Saurabh y Sahoo [31] con turbidimetría. En primer lugar, se preparó una suspensión de Micrococcus lysodeikticus disolviendo 0,2 mg ml-1 en un tampón de fosfato de sodio 0,05 M (pH 6,2). Luego, se agregaron 50 ul de suero a una suspensión de 2 ml de Micrococcus lysodeikticus, y la mezcla de reacción se dividió en una placa de microtitulación de 96-pocillos (Hyperion, Alemania), y la DO inicial se midió espectrofotométricamente a 450 nm inmediatamente. La DO final se midió después de la incubación de la mezcla de reacción a 24 grados C durante 1 h. Una unidad de actividad de lisozima se definió como la cantidad de muestra que causa una disminución en la absorbancia de 0,001/min de lisozima de la muestra calibrada usando una curva estándar determinada con lisozima de clara de huevo de gallina (Sigma) en PBS. La actividad del complemento alternativo sérico (ACH50) se midió en base a Yano et al. [32], en el que se utilizaron glóbulos rojos (RBC) de conejo como diana. Los niveles de cortisol en suero se midieron mediante el método ELISA competitivo utilizando un kit comercial (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. La expresion genica. El ARN total de los hígados de pescado recolectados después de una prueba desafiante se aisló utilizando el kit GeneAll (GeneAll Biotechnology, Seúl, Corea). Después de evaluar la calidad del ARN mediante electroforesis en geles de agarosa, se trataron 2 ug de ARN total con ADNasa I y se usaron para la síntesis de la primera cadena de ADNc usando cebadores oligo (dT), dNTP 10 mM y transcriptasa inversa de acuerdo con las instrucciones del fabricante. instrucciones (Thermo Scientific, Alemania). Los cebadores específicos de genes se mencionaron para el análisis de RT-PCR en la Tabla 2. El gen de beta-actina se usó como control interno. La qPCR se llevó a cabo utilizando RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII) siguiendo las instrucciones del fabricante. La reacción que constaba de 10 ul de SYBR green mix, 1 ul de ADNc diluido, 0,5 ul de cada cebador y agua Millipore se añadió a un volumen final de 20 ul. Para la reacción se utilizó el siguiente programa: 10 min a 95°C, desnaturalización a 95°C por 10 s, hibridación a 60°C por 40 s, y extensión a 72°C por 35 s por 40 ciclos. El nivel de ARN se calculó según el método 2-ΔΔCT [33]. Se realizaron tres repeticiones biológicas para cada experimento.

2.8. Análisis estadístico. Los datos (media ± SD) se analizaron mediante un análisis de varianza (ANOVA) de una vía seguido de la prueba de rango múltiple de Duncan para comparar las medias entre grupos. Antes de los análisis, se evaluó la normalidad y la homogeneidad de la varianza de los datos con la prueba de Shapiro-Wilk y la prueba de Levene, respectivamente. También se utilizó ANOVA de dos vías para probar los efectos de la dieta, el estrés por calor y sus interacciones. Los análisis estadísticos se realizaron utilizando el software SPSS versión 23, y P < 0:05 fue el nivel de significación aceptado.

3. Resultados

3.1. Desempeño del crecimiento. Hubo diferencias significativas en el rendimiento del crecimiento y los valores más altos de FBW, WG, SGR y FI se observaron en T2 y T3 (Tabla 3, P < 0:05). El FCR disminuyó significativamente en la quercetina alimentada con peces (Tabla 3, P< 0:05).

3.2. Respuesta inmune sérica. La actividad de lisozima y ACH50 disminuyó notablemente cuando las carpas comunes se expusieron a estrés por calor, y la actividad más baja se observó en peces alimentados con una dieta de control y peces alimentados con dietas suplementadas, lo que representa los niveles más altos (Tabla 4, P < 0:05). Antes y después del estrés por calor, diferentes niveles de quercetina aumentaron significativamente la actividad de ACH50 y lisozima, y ​​las actividades más altas se observaron en peces alimentados con 400 (T2) y 600 (T3) mg/kg de quercetina (Tabla 4, P < 0:05).

3.3. Enzimas Antioxidantes. Catalasa, MDA y GPx aumentaron significativamente en peces expuestos a estrés por calor, con el nivel más alto en peces alimentados con una dieta de control y peces alimentados con una dieta suplementada con quercetina mostrando los niveles más bajos (Tabla 4, P < {{3} }:05). Los niveles de SOD disminuyeron significativamente en los peces expuestos al estrés por calor (cuando se combinaron todos los tratamientos); además, hubo una diferencia significativa en los niveles de SOD entre los tratamientos antes y después del desafío térmico, y el nivel más alto se registró en T2 en ambas fases (Cuadro 5, P < 0:05).

3.4. Parámetros de estrés. Antes y después del estrés por calor, los niveles de glucosa y cortisol fueron significativamente más altos en el grupo de control en comparación con los tratamientos con suplementos de quercetina (Tabla 6, P < 0:05). La exposición de la carpa común a altas temperaturas condujo a un aumento significativo de AST y ALT en todos los tratamientos, pero los peces alimentados con 600 mg/kg de quercetina tuvieron los niveles más bajos (Tabla 6, P < 0:05). Además, antes y después del desafío, las actividades más altas y más bajas de ALT y AST se observaron en el grupo control y T3, respectivamente (Tabla 6, P < 0:05).

3.5. La expresion genica. Después de la exposición al estrés por calor, la expresión de GPx (Figura 1(a)) aumentó notablemente y los niveles más altos de ARN se observaron en peces alimentados con 400 mg/kg de quercetina (P < 0: 05). No se observaron efectos marcados para GR (Figura 1(b)) e IL8 (Figura 1(c)), pero fueron mayores en peces alimentados con alimentos suplementados con quercetina (P > 0:05).

La expresión del gen de la lisozima fue notablemente mayor en la carpa común alimentada con alimentos suplementados con quercetina que en el grupo de control (Figura 1 (d)).

4. Discusión

En este estudio, la incorporación de quercetina en la dieta mejoró significativamente el crecimiento y la eficiencia alimenticia en la carpa común. En consecuencia, los mejores WG, SGR, FI y FCR se obtuvieron en los peces alimentados con dietas suplementadas con 400 y 600 mg/kg de quercetina. Hallazgos anteriores indicaron que la quercetina en la dieta tuvo un efecto positivo en el WG, SGR y FCR en la tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus) [34], la carpa herbívora (Ctenopharyngodon idella) () y la carpa común [13]. El efecto promotor de la quercetina en el rendimiento del crecimiento de los peces puede estar relacionado con su mejor eficacia para estimular la secreción de enzimas digestivas como la proteasa, la amilasa y la lipasa [13, 34], disminuyendo la abundancia de bacterias dañinas del intestino y promoviendo las poblaciones de bacterias beneficiosas [35], mejorando la función de barrera intestinal y mejorando el área de superficie de las vellosidades intestinales y las células caliciformes [36].

La actividad de ACH50 es un parámetro significativo que se benefició en la evaluación de la respuesta inmunitaria no específica humoral en peces. Se informa una disminución en los niveles séricos de ACH50 en diferentes situaciones de estrés a las que están expuestos los peces. En el presente estudio, la actividad sérica de ACH50 aumentó significativamente en el grupo suplementado con las dosis de 400 y 600 mg/kg de quercetina antes del estrés y después del estrés en comparación con el grupo control. En conclusión, dado que el hígado es la principal fuente de proteínas del complemento, el aumento de los niveles de ACH50 se puede explicar por la mejora de la salud y el funcionamiento del hígado. Nuestros resultados en términos de aumento de la actividad de ACH50 están totalmente de acuerdo con los hallazgos de estudios anteriores en dietas alimentadas con carpas comunes que incorporan 200 u 800 mg/kg de quercetina [16]. Además, los resultados están en línea con estudios previos que muestran que los aditivos alimentarios exógenos son exitosos para prevenir la reducción de la actividad del complemento posterior al estrés [37, 38].

La lisozima es un péptido antimicrobiano importante de los patógenos invasores del sistema inmunitario innato. Se encontró una disminución significativa en la actividad de la lisozima sérica en el grupo de control de peces expuestos a 32 grados C durante 48 horas. Se observó una disminución similar en la actividad de la lisozima sérica a temperaturas más altas en la tilapia del Nilo, Oreochromis niloticus [39]. En el presente estudio, la actividad de la lisozima sérica aumentó significativamente en todos los grupos suplementados con quercetina antes y después del estrés en comparación con el grupo de control. Esto sugiere que la suplementación con quercetina inhibe la inmunosupresión posterior al estrés por altas temperaturas.

Paralelamente a nuestro estudio, los niveles de lisozima también aumentaron en algunas especies de peces alimentados con alimentos que contienen quercetina. Por ejemplo, C. carpio alimentado con una dieta que contenía 200 o 800 mg kg−1 de quercetina mostró un aumento en los niveles de lisozima en suero, intestino y moco [16]. Wang et al. [18] agregaron 0,01, 0,1, 1, 10, 100 y 1000 ug/l de quercetina al agua de crianza del pez cebra (Danio rerio) e informaron que la actividad de la lisozima sérica fue significativamente mayor en el grupo de 1 ug/l de quercetina que en el de grupo de control.

Es bien sabido que la glucosa sérica se usa como un índice de estrés inespecífico en estudios con peces [40, 41]. En este estudio, los suplementos de quercetina redujeron significativamente el contenido de glucosa sérica en el grupo de preestrés. Hay algunos informes disponibles sobre los efectos hipoglucemiantes de la quercetina [42, 43]. Esto fue respaldado en un estudio reciente, donde la quercetina disminuye los niveles de glucosa en suero en la carpa común [16]. Sin embargo, a diferencia de nuestro estudio, los niveles de glucosa sérica en el bagre plateado, la reina Rhamdia [12] y el besugo, Megalobrama amblycephala [44], alimentados con alimentos que contenían quercetina, permanecieron sin cambios.

La superóxido dismutasa (SOD), la catalasa (CAT) y la glutatión peroxidasa (GPx) son las principales enzimas que eliminan las especies reactivas de oxígeno (ROS) y la desintoxicación de H2O2 e hidroperóxidos, respectivamente. Además, el malondialdehído (MDA) se utiliza con frecuencia como biomarcador de la peroxidación lipídica. Nuestros resultados en términos de aumento de SOD y disminución de la actividad de MDA están totalmente de acuerdo con los hallazgos de estudios anteriores en carpa común, C. carpio, alimentados con dietas incorporadas con 800 mg/kg de quercetina. Del mismo modo, Ibrahim et al. [45] informaron el aumento de SOD y GPx y la disminución del efecto de MDA de la quercetina en la tilapia del Nilo, Oreochromis niloticus.

Además, la expresión de ARNm de SOD [46] y los niveles de actividad de SOD y CAT en cerebro, branquias, hígado y/o músculo [12] fueron mayores en peces alimentados con dietas de quercetina. Los parámetros SOD, CAT, MDA y GPx juegan un papel importante en la respuesta antioxidante en diferentes condiciones de estrés como pesticidas [47], metales [48], altas temperaturas [49, 50], hipoxia [50] y temperaturas frías [51]. Sin embargo, no hay ningún estudio disponible sobre los efectos de la quercetina en la capacidad antioxidante de los peces en condiciones de estrés por altas temperaturas. En el presente estudio, la disminución de los niveles de CAT, MDA y GPx y el aumento de los niveles de SOD observados en condiciones de estrés posteriores a altas temperaturas indican un efecto antioxidante significativo de la quercetina. De manera similar, el extracto de antraquinona en la dieta, especialmente en niveles de 0,1- 0,2 por ciento, aumentó significativamente la SOD y disminuyó los niveles de MDA en el hígado en M. rosenbergii bajo estrés por alta temperatura [25].

Las actividades de las enzimas séricas se aceptan como indicadores importantes del daño tisular; por ejemplo, AST y ALT son indicadores de daño hepático y la lactato deshidrogenasa (LDH) de daño hepático o muscular en peces [52]. Por lo tanto, los aumentos de estas enzimas en la sangre podrían atribuirse al daño del tejido hepático y muscular. Estudios previos mostraron que las actividades séricas de ALT y AST disminuyeron cuando los peces fueron alimentados con quercetina [13, 16]. Hasta el momento, no se ha encontrado en la literatura ningún estudio sobre los efectos de la quercetina bajo estrés a alta temperatura en los niveles de enzimas séricas de peces. Sin embargo, [25] informaron que las actividades de AST y ALT en camarones de agua dulce (M. rosenbergii) alimentados con una dieta que contenía extracto de antraquinona de R. officinale Bail bajo estrés por alta temperatura fueron significativamente más bajas que las de los peces de control. En este estudio, las concentraciones séricas de AST y ALT (excepto 200 mg/kg) disminuyeron en peces alimentados con alimentos suplementados con quercetina antes del estrés por altas temperaturas. Esta tendencia también se mantuvo después del estrés por alta temperatura.

Los bajos niveles de glucosa en suero en los peces estresados ​​por altas temperaturas pueden ser el resultado de condiciones de desnutrición, trastornos hepáticos e inflamación [25, 50, 53]. Esto puede estar relacionado con los aumentos en el uso de glucosa en los tejidos periféricos, probablemente relacionado con la mejora de la demanda de energía generada por la respuesta al estrés [54]. Se observó una reducción similar en el nivel de glucosa sérica a una temperatura más alta (21 grados C) en la trucha arcoíris, Oncorhynchus mykiss [50]. Sin embargo, en contraste con nuestros hallazgos, se informaron niveles elevados de glucosa en la sangre en la dorada de Wuchang, M. amblycephala, bajo estrés por alta temperatura [26]. Estos diferentes resultados pueden estar asociados con diferencias en las condiciones de crianza, el tiempo de exposición, las especies de peces, el tamaño de los peces y/o la edad.

El cortisol en sangre es uno de los índices más importantes de la respuesta al estrés por calor en los peces [55]. En este estudio, los niveles de cortisol fueron significativamente más bajos en peces alimentados con diferentes niveles de quercetina antes del estrés por calor. Además, los peces alimentados con dietas suplementadas con quercetina mostraron niveles significativamente más bajos de cortisol después del estrés por calor, lo que destaca el potencial protector de la suplementación con quercetina en el metabolismo de la carpa común. De manera similar, la tilapia del Nilo alimentada con butirato de sodio en la dieta mostró una disminución en los niveles de cortisol cuando se expuso al estrés por calor [30]. En este estudio, el cortisol fue significativamente más bajo durante el estrés por calor en los peces alimentados con quercetina en comparación con el grupo de control. Estos resultados pueden estar relacionados con los efectos antiestrés de la quercetina que inhibió el dominio de cortisol elevado.

En línea con estos hallazgos, se puede sugerir que la quercetina (400-600 mg/kg) puede ser una sustancia útil en el tratamiento y protección de las células frente a un posible estrés oxidativo.

Disponibilidad de datos

Los conjuntos de datos generados y/o analizados durante el estudio actual están disponibles de los autores correspondientes previa solicitud razonable.

Conflictos de interés

Los autores declaran no tener ningún conflicto de interés

Expresiones de gratitud

Este estudio fue apoyado por la Universidad de Zabol (Irán) con un código de subvención (IR-UOZ-GR-6313). Este trabajo fue parcialmente apoyado por la Universidad de Chiang Mai.

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[14] SW Zhai y SL Liu, "Efectos de la quercetina en la dieta sobre el rendimiento del crecimiento, el nivel de lípidos séricos y la composición corporal de la tilapia (Oreochromis niloticus)", Revista italiana de ciencia animal, vol. 12, núm. 4, artículo e85, 2013.

[15] Z. Xu, X. Li, H. Yang, G. Liang, B. Gao y X. Leng, "La quercetina dietética mejoró el crecimiento, la antioxidación y la calidad de la carne de la carpa herbívora (Ctenopharyngodon idella)", Journal de la Sociedad Mundial de Acuicultura, vol. 50, núm. 6, págs. 1182–1195, 2019.

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