5. Conclusiones
En los últimos años, se ha logrado un progreso significativo en la comprensión de la biología de los melanocitos y su mecanismo subyacente, lo que abre nuevas vías de investigación para el descubrimiento de nuevos inhibidores de la melanogénesis. Además de la supresión directa de la actividad catalítica de TYR, otros métodos para la interrupción de la melanogénesis incluyen el control postranscripcional de TYR, la regulación de la transferencia de melanosomas y la supresión de la transcripción de TYR mediante la supresión de las vías de señalización aguas arriba. Estos implican principalmente la inhibición del regulador maestro MITF, como resultado de la reducción de los niveles de cAMP intracelular, aumentos en la -catenina citoplasmática y/o la activación de la señalización de ERK. Por lo tanto, se han identificado con éxito un gran número de inhibidores que actúan a través de estos mecanismos alternativos antes mencionados (73).

Según estudios relevantes,cistanchees una hierba común que se conoce como "la hierba milagrosa que prolonga la vida". Su principal componente escistanósido, que tiene varios efectos tales comoantioxidante, antiinflamatorio, ypromoción de la función inmunológica. El mecanismo entre la cistanche ypielblanqueoreside en el efecto antioxidante de la cistancheglucósidos. La melanina en la piel humana es producida por la oxidación de tirosina catalizada portirosinasa, y la reacción de oxidación requiere la participación de oxígeno, por lo que los radicales libres de oxígeno en el cuerpo se convierten en un factor importante que afecta la producción de melanina. Cistanche contienecistanósido, que es un antioxidante y puede reducir la generación de radicales libres en el cuerpo, por lo queinhibiendo la producción de melanina.

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Además, la cistanche también tiene la función de promover la producción de colágeno, lo que puede aumentar la elasticidad y el brillo de la piel y ayudar a reparar las células dañadas de la piel. Los glucósidos de feniletanol de Cistanche tienen un efecto de regulación negativa significativo sobre la actividad de la tirosinasa, y se ha demostrado que el efecto sobre la tirosinasa es una inhibición competitiva y reversible, lo que puede proporcionar una base científica para desarrollar y utilizar los ingredientes blanqueadores de Cistanche. Por lo tanto, la cistanche tiene un papel clave en el blanqueamiento de la piel. Puede inhibir la producción de melanina para reducir la decoloración y la opacidad; y promover la producción de colágeno para mejorar la elasticidad y el brillo de la piel. Debido al reconocimiento generalizado de estos efectos de la cistanche, muchos productos para blanquear la piel han comenzado a infundir ingredientes a base de hierbas como la cistanche para satisfacer la demanda de los consumidores, aumentando así el valor comercial de la cistanche en los productos para blanquear la piel. En resumen, el papel de la cistanche en el blanqueamiento de la piel es crucial. Su efecto antioxidante y su efecto productor de colágeno pueden reducir la decoloración y la falta de brillo, mejorar la elasticidad y el brillo de la piel y, por lo tanto, lograr un efecto blanqueador. Además, la amplia aplicación de Cistanche en productos para blanquear la piel demuestra que no se puede subestimar su papel en el valor comercial.

Entre estos inhibidores, se busca un compuesto suave, estable, seguro y eficaz a partir de extractos naturales como materia prima para el desarrollo de productos para el cuidado y el blanqueamiento de la piel. Para tales posibles inhibidores de la melanogénesis, se requieren más estudios in vitro/in vivo y ensayos clínicos para evaluar la eficacia y la seguridad. Para acelerar el proceso de descubrimiento de fármacos, se debe aplicar una variedad de modelos y metodologías para evaluar su posible actividad de hipopigmentación. Desde una perspectiva metodológica (140,141), se debe adoptar un proceso de varios pasos para estas investigaciones (Fig. 3). La evaluación inicial de las propiedades blanqueadoras in vitro debe realizarse con TYR purificado y/u otras proteínas melanogénicas, seguida del uso de cultivos de melanocitos para examinar los posibles efectos citotóxicos y de síntesis de melanina. Para una evaluación biológica adicional, se deben adoptar sistemas de cocultivo y modelos de piel reconstruidos para detectar la capacidad de los nuevos compuestos para interferir con el proceso de melanogénesis, especialmente después de estímulos que incluyen radiación UV, exposición a a-MSH o citocinas proinflamatorias. Además, se debe realizar una investigación sobre el mecanismo regulador involucrado en la melanogénesis. Finalmente, la actividad in vivo de los posibles agentes debe evaluarse utilizando técnicas no invasivas como la fotografía con luz ultravioleta o la espectrofotometría para obtener resultados comparables (12,142). Se espera que la metodología de investigación antes mencionada pueda brindar mejores oportunidades para el desarrollo de nuevos agentes aclarantes que sean efectivos y seguros para su uso en las industrias clínica y cosmética.

Aunque prometedor, el uso de compuestos para aclarar la piel requiere más investigación debido a los diversos modos de acción o efectos secundarios (77). El ácido kójico y la arbutina siguen siendo los compuestos clásicos que se pueden usar tópicamente como agentes para aclarar la piel en un entorno clínico debido a su eficacia comprobada. Compuestos naturales adicionales para aclarar la piel, que incluyen extracto de morera, regaliz y limón, se complementan regularmente en productos para el cuidado de la piel, para fortalecer el efecto de la arbutina o el ácido kójico (143,144). El producto cosmético ideal para aclarar la piel debe incluir una formulación que comprenda compuestos que actúen en diferentes vías durante el proceso de melanogénesis. Esta futura combinación debería contener múltiples objetivos y capas, incluido el control de la expresión de TYR en la transcripción y los niveles de proteínas, la inhibición de la actividad enzimática en la vía de la melanogénesis, la supresión de la proliferación de melanocitos y el transporte de melanosomas a nivel celular. Aunque los mecanismos de estos inhibidores se han caracterizado bien in vitro, no se han aplicado tópicamente en cosméticos y cosmecéuticos. Por lo tanto, se requiere una evaluación adicional de su actividad de blanqueamiento de la piel in vivo o ensayos clínicos paralelos en humanos. En resumen, desde un punto de vista clínico, se requieren con urgencia investigaciones mecánicas adicionales de los nuevos moduladores naturales de la melanogénesis.
Expresiones de gratitud
No aplica.
Fondos
Este proyecto fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (subvención n.° 31671026) y el Proyecto de Investigación del Hospital General de Nanjing (subvención n.° 2015056).
Disponibilidad de datos y materiales.
No aplica.
Contribuciones de los autores
GG y HS diseñaron el tema de la revisión. WL, YC y AT recuperaron la literatura relevante. WQ escribió y revisó el artículo. DZ ayudó a revisar el manuscrito y proporcionó importantes sugerencias de revisión intelectual.
Aprobación ética y consentimiento para participar
No aplica.
Consentimiento del paciente para la publicación
No aplica.
Conflicto de intereses
Los autores declaran que no tienen intereses contrapuestos.
Referencias
1. Pillaiyar T, Manickam M y Namasivayam V: agentes blanqueadores de la piel: perspectiva de la química médica de los inhibidores de la tirosinasa. J Enzyme Inhib Med Chem 32: 403-425, 2017.
2. Videira IF, Moura DF y Magina S: Mecanismos que regulan la melanogénesis. An Bras Dermatol 88: 76‑83, 2013.
3. D'Mello SA, Finlay GJ, Baguley BC y Askarian-Amiri ME: vías de señalización en la melanogénesis. Int J Mol Sci 17: pii: E1144, 2016. Gillbro
4. Gillbro JM y Olsson MJ: La melanogénesis y los mecanismos de los agentes para aclarar la piel--enfoques existentes y nuevos. Int J Cosmet Sci 33: 210-221, 2011.
5. Desmedt-Cosmet Sci 33: 210 221, 2011. B, Courselle P, De Beer JO, Rogiers V, Grosber M, Deconinck E y De Paepe K: Descripción general de los agentes blanqueadores de la piel con una visión de los agentes ilegales mercado cosmético en Europa. J 30: 943‑950, 2016.
6. Costin Eur Acad Dermatol Venereol GE y Hearing VJ: Pigmentación de la piel humana: los melanocitos modulan el color de la piel en respuesta al estrés. Faseb J 21: 976‑994, 2007.
7. Takizawa T, Imai T, Onose J, Ueda M, Tamura T, Mitsumori K, Izumi K y Hirose M: Mejora de la hepatocarcinogénesis por ácido kójico en modelos de dos etapas en ratas después del inicio con N-bis({{3} }hidroxipropil)nitrosamina o N-dietilnitrosamina. Toxicol Sci 81: 43-49, 2004.
8.García-Gavín J, González-Vilas D, Fernández-Redondo V y Toribio J: Dermatitis de contacto pigmentada por ácido kójico. Un efecto secundario paradójico de un aclarador de piel. Dermatitis de contacto 62:63‑64, 2010.
9. Chung YJ, Kim DH, Kim SR, Lee Y, et al KJ, Lee KW, Jeong HJ, Chun HO, Jang P, Byun EJ, Choi: Caracterización de un inhibidor de molécula pequeña de la melanogénesis que inhibe 1830: 4752‑4761 , 2013.
10. HongBiophys Acta de una formulación que contiene tanasa para el cuidado de la piel: Estabilidad física, actividad colagenasa, elastasa y tirosinasa y captadores de óxido nítrico (NO). Biochim YH, Jung EY, Noh DO y Suh HJ: Efectos fisiológicos: extracto de té verde convertido en actividades. Integr Med Res 3: 25 -33, 2014.
11. Chiang HM, Chien YC, Wu CH, Kuo YH, Wu WC, Pan YY, Su YH y Wen KC: el extracto hidroalcohólico de Rhodiola rosea L. (Crassulaceae) y su hidrolizado inhiben la melanogénesis en las células B16F0 regulando la vía CREB/MITF/tirosinasa. Food Chem Toxicol 65: 129‑139, 2014.
12. Lajis AFB y Ariff AB: descubrimiento de nuevos compuestos despigmentantes y su eficacia para tratar la hiperpigmentación: evidencia de un estudio in vitro. J Cosmet Dermatol 18: 703-727, 2019.
13. Ito S y Wakamatsu K: análisis cuantitativo de eumelanina y feomelanina en humanos, ratones y otros animales: una revisión comparativa. Pigment Cell Res 16: 523‑531, 2003.
14. Slominski A, Tobin DJ, Shibahara S y Wortsman J: pigmentación de melanina en la piel de los mamíferos y su regulación hormonal. Physiol Rev 84: 1155-1228, 2004.
15. Schiaffino MV: vías de señalización en biogénesis y patología de melanosomas. Int J Biochem Cell Biol 42: 1094-1104, 2010.
16. Pillaiyar T, Manickam M y Jung SH: Inhibidores de la melanogénesis: revisión de una patente (2009-2014). Expert Opin Ther Pat 25:775-788, 2015.
17. Audiencia VJ y Jiménez M: Tirosinasa de mamíferos: el punto crítico de control regulatorio en la pigmentación de los melanocitos. Int J Biochem19: 1141-1147, 1987.
18. Halaban R, Patton RS, Cheng E, Svedine S, Trombetta ES, Wahl ML, Ariyan S y Hebert DN: la acidificación anormal de las células de melanoma induce la retención de tirosinasa en la vía secretora temprana. J Biol Chem 277: 14821-14828, 2002.
19. Hou L, Panther JJ y Arnheiter H: señalización y regulación transcripcional en el linaje de melanocitos derivados de la cresta neural: interacciones entre KIT y MITF. Desarrollo 127:5379-5389, 2000.
20. Ryu S, Johnson A, Park Y, Kim B, Norris D, Armstrong CA y Song PI: La hormona estimulante de los melanocitos alfa suprime las respuestas funcionales mediadas por TLR2-mediante IRAK-M en queratinocitos humanos normales. PLoS One 10: e0136887, 2015.
21. Edelman AM, Blumenthal DK y Krebs EG: proteínas serina/treonina quinasas. Annu Rev Biochem 56: 567-613, 1987.
22. Yasumoto K, Yokoyama K, Shibata K, Tomita Y y Shibahara S: Microphthalmia-associated transcription factor as a regulator for melanocyte-specific transcription of the human tyrosinasa gene. Mol Cell Biol 14: 8058-8070, 1994.
23. Bertolotto C, Abbe P, Hemesath TJ, Bille K, Fisher DE, Ortonne JP y Ballotti R: Producto del gen de microftalmia como transductor de señal en la diferenciación de melanocitos inducida por AMPc. J Cell Biol 142: 827-835, 1998.
24. Zhu PY, Yin WH, Wang MR, Dang YY y Ye XY: Andrographolide suprime la síntesis de melanina a través de la vía de señal Akt/GSK3/-catenina. J Dermatol Sci 79: 74-83, 2015.
25. Hwang I, Park JH, Park HS, Choi KA, Seol KC, Oh SI, Kang S y Hong S: las células madre neurales inhiben la producción de melanina mediante la activación de los inhibidores de Wnt. J Dermatol Sci 72: 274 -283, 2013.
26. Steingrimsson E, Copeland NG y Jenkins NA: Melanocitos y la red del factor de transcripción de microftalmía. Annu Rev Genet 38: 365‑411, 2004.
27. Takeda K, Yasumoto K, Takada R, Takada S, Watanabe K, Udono T, Saito H, Takahashi K y Shibahara S: inducción de un factor de transcripción asociado a la microftalmía específico de melanocitos por Wnt‑3a. J Biol Chem 275: 14013‑14016, 2000.
28. Widlund HR, Horstmann MA, Price ER, Cui J, Lessnick SL, WuM, He X y Fisher DE: El crecimiento del melanoma inducido por beta-catenina requiere el factor de transcripción asociado a la microftalmia objetivo corriente abajo. J Cell Biol 158: 1079-1087, 2002.
29. Martinez-Anton A, Gras D, Bourdin A, Dubreuil P y Chanez P: KIT como diana terapéutica para enfermedades no oncológicas. Pharmacol Ther 197: 11-37, 2019.
30. Niwano T, Terazawa S, Nakajima H e Imokawa G: La melanogénesis estimulada por el factor de células madre en melanocitos humanos se anula al interrumpir la fosforilación de MSK1: Evidencia de la participación del eje p38/MSK1/CREB/MITF. Arch Dermatol Res 310: 187‑196, 2018.
31. Li PH, Liu LH, Chang CC, Gao R, Leung CH, Ma DL y David Wang HM: silenciamiento del gen del factor de células madre en fibroblastos para regular la producción del factor paracrino y mejorar la expresión de c-Kite en los melanocitos en la melanogénesis. Int J Mol Sci 19: pii: E1475, 2018.
32. Flaherty KT, Hodi FS y Fisher DE: De los genes a los medicamentos: estrategias específicas para el melanoma. Nat Rev Cancer 12: 349‑361, 2012.
33. Bonaventure J, Domingues MJ y Larue L: Mecanismos celulares y moleculares que controlan la migración de melanocitos y células de melanoma. Pigment Cell Melanoma Res 26: 316‑325, 2013.
34. Ahn JH, Jin SH y Kang HY: LPS induce la melanogénesis a través de la activación de p38 MAPK en melanocitos humanos. Arch Dermatol Res 300: 325-329, 2008.
35. Kim JY, Lee EJ, Ahn Y, Park S, Kim SH y Oh SH: un compuesto químico del extracto de fruta de Juglans mandshurica inhibe la melanogénesis a través de la degradación de MITF asociada con p-ERK. Fitomedicina57: 57‑64, 2019.
36. Hwang E, Lee TH, Lee WJ, Shim WS, Yeo EJ, Kim S y Kim SY: Un nuevo derivado sintético de Piper amida NED -180 inhibe la hiperpigmentación activando las vías PI3K y ERK y regulando Ca2 plus entrada a través de los canales TRPM1. Pigment Cell Melanoma Res 29: 81‑91, 2016.
37. Vance KW y Goding CR: La red de transcripción que regula el desarrollo de melanocitos y el melanoma. Pigment Cell Res17: 318-325, 2004.
38. Seberg HE, Van Otterloo E y Cornell RA: Más allá de MITF: Múltiples factores de transcripción regulan directamente el fenotipo celular en melanocitos y melanoma. Pigment Cell Melanoma Res 30: 454‑466, 2017.
39. Price ER, Horstmann MA, Wells AG, Weilbaecher KN, Takemoto CM, Landis MW y Fisher DE: la señalización de la hormona estimulante de los melanocitos alfa regula la expresión de la microftalmía, un gen deficiente en el síndrome de Waardenburg. J Biol Chem 273: 33042-33047, 1998.
40. Bondurand N, Pingault V, Goerich DE, Lemort N, Sock E, Le Caignec C, Wegner M y Goossens M: Interacción entre SOX10, PAX3 y MITF, tres genes alterados en el síndrome de Waardenburg. Hum Mol Genet 9: 1907-1917, 2000.
41. Jacquemin P, Lannoy VJ, O'Sullivan J, Read A, Lemaigre FP y Rousseau GG: El factor de transcripción one cut-2 controla el gen del factor de transcripción asociado a la microftalmía. Biochem Biophys Res Commun 285: 1200-1205, 2001.
42. Saito H, Yasumoto K, Takeda K, Takahashi K, Fukuzaki A, Orikasa S y Shibahara S: La isoforma del factor de transcripción asociado a la microftalmía específica de melanocitos activa su promotor genético a través de la interacción física con el factor 1 potenciador de linfoides. J Biol Chem 277: 28787-28794, 2002.
43. Hsiao JJ y Fisher DE: Las funciones del factor de transcripción asociado a la microftalmía y la pigmentación en el melanoma. Arch Biochem Biophys563: 28‑34, 2014.
44. Hasegawa T, Takano F, Takata T, Niiyama M y Ohta T: glucósidos monoterpénicos bioactivos conjugados con ácido gálico de las hojas de Eucalyptus globulus. Fitoquímica 69:747-753, 2008.
45. Choi MH, Jo HG, Yang JH, Ki SH y Shin HJ: actividades antioxidantes y antimelanogénicas de los tallos de bambú (hipnosis de la variedad Phyllostachys nigra) a través de la regulación negativa de MITF mediada por PKA/CREB en células de melanoma B16F10. Int J Mol Sci 19: pii: E409,2018.
46. Yasumoto K, Yokoyama K, Takahashi K, Tomita Y y Shibahara S: Análisis funcional del factor de transcripción asociado a microftalmía en la transcripción específica de células pigmentarias de los genes de la familia de tirosinasa humana. J Biol Chem 272: 503-509, 1997.
47. Tachibana M: MITF: Una corriente que fluye para las células pigmentarias. Pigment Cell Res 13: 230-240, 2000.
48. Fang D, Tsuji Y y Setaluri V: regulación negativa selectiva del gen de la familia de tirosinasa TYRP1 mediante la inhibición de la actividad del factor de transcripción de melanocitos, MITF. Ácidos nucleicos Res 30: 3096‑3106, 2002.
49. Huang HC, Chang SJ, Wu CY, Ke HJ y Chang TM: [6]‑Shogaol inhibe la melanogénesis inducida por -MSH a través de la aceleración de la degradación de MITF mediada por ERK y PI3K/Akt. Biomed Res Int 2014: 842569, 2014.
50. Alam MB, Seo BJ, Zhao P y Lee SH: Actividades antimelanogénicas de Heracleum moellendorffii a través de la regulación a la baja de MITF mediada por ERK1/2-. Int J Mol Sci 17: pii: E1844, 2016.
51. Zhao P, Alam MB, An H, Choi HJ, Cha YH, Yoo CY, Kim HH y Lee SH: efecto antimelanogénico de un extracto de semilla de oroxylum indicium mediante la supresión de la expresión de MITF mediante la activación de la proteína de señalización MAPK. Int J Mol Sci 19: pii: E760,
52. 2018. Wu PY, You YJ, Liu YJ, Hou CW, Wu CS, Wen KC, Lin CY y Chiang HM: Sesamol inhibió la melanogénesis al regular la transducción de señales relacionadas con la melanina en las células B16F10. Int J Mol Sci 19: pii: E1108, 2018.
53. Truong XT, Park SH, Lee YG, Jeong HY, Moon J, H y Jeon TI: El ácido protocatequiico de la pera inhibe la melanogénesis en las células de melanoma. Int J Mol Sci 18: pii: E1809, 2017.
54. Sun L, Guo Y, Zhang Y y Zhuang Y: actividades antioxidantes y antitirosinasa de extractos fenólicos de polen de abeja de colza y melanogénesis inhibitoria por vía cAMP/MITF/TYR en células de melanoma de ratón B16. Frente Pharmacol 8: 104, 2017.
55. Chen YS, Lee SM, Lin CC y Liu CY: Hispolon reduce la producción de melanina e induce la apoptosis en las células de melanoma a través de la regulación a la baja de las expresiones de la tirosinasa y el factor de transcripción asociado a la microftalmía (MITF) y la activación de la caspasa-3 ,-8 y -9. Int J Mol Sci15: 1201-1215, 2014.
56. Wu QY, Wong ZC, Wang C, Fung AH, Wong EO, Chan GK, Dong TT, Chen Y y Tsim KW: isoorientina derivada de Gentiana veitchiorum Hemsl. las flores inhiben la melanogénesis al regular a la baja la expresión de tirosinasa inducida por MITF. Fitomedicina 57: 129‑136, 2019.
57. Seong ZK, Lee SY, Poudel A, Oh SR y Lee HK: Los componentes de crypto taenia japonica inhiben la melanogénesis a través de las vías de señalización asociadas a CREB y MAPK en células de melanoma murino B16. Moléculas 21: pii: E1296, 2016.
58. Kang SJ, Choi BR, Lee EK, Kim SH, Yi HY, Park HR, Song CH, Lee YJ y Ku SK: efecto inhibitorio del polvo de concentración de granada seca sobre la melanogénesis en células de melanoma B16F10; implicación de las vías de señalización p38 y PKA. Int J Mol Sci16: 24219‑24242, 2015.
59. Lee HJ, Lee WJ, Chang SE y Lee GY: hesperidina, un antioxidante popular que inhibe la melanogénesis a través de la degradación de MITF mediada por Erk1/2. Int J Mol Sci 16: 18384‑18395, 2015.
60. Chae JK, Subedi L, Jeong M, Park YU, Kim CY, Kim H y Kim SY: Gomisin N inhibe la melanogénesis mediante la regulación de las vías de señalización PI3K/Akt y MAPK/ERK en los melanocitos. Int J Mol Sci 18: pii: E471, 2017.
61. Su TR, Lin JJ, Tsai CC, Huang TK, Yang ZY, Wu MO, Zheng YQ, Su CC y Wu YJ: inhibición de la melanogénesis por ácido gálico: posible participación de PI3K/Akt, MEK/ERK y Wnt Vías de señalización de /-catenina en células B16F10. Int J Mol Sci 14: 20443-20458, 2013.
62. Lee DH, Ahn SS, Kim JB, Lim Y, Lee YH y Shin SY: Regulación a la baja de la activación inducida por hormona estimulante de melanocitos del eje Pax3-MITF-tirosinasa por extracto etanólico de sorgo en melanoma B16F10 células. Int J Mol Sci 19: pii: E1640, 2018.
63. Tsao YT, Huang YF, Kuo CY, Lin YC, Chiang WC, Wang WK, Hsu CW y Lee CH: Hinokitiol inhibe la melanogénesis a través de la señalización de AKT/mTOR en células de melanoma de ratón B16F10. Int J Mol Sci 17: 248, 2016.
64. Ko GA, Shrestha S y Kim Cho S: Los extractos de fruta de Sageretia thea ricos en linoleato de metilo y linoleato de metilo regulan a la baja la melanogénesis a través de la vía de señalización Akt/GSK3. Nutr Res Práctica 12: 3-12, 2018.
65. Lee SJ, Lee WJ, Chang SE y Lee GY: efecto antimelanogénico del ginsenósido Rg3 a través de la inhibición mediada por quinasa regulada por señales extracelulares del factor de transcripción asociado a la microftalmía. J Ginseng Res. 39: 238-242, 2015.
66. Cho BR, Jun HJ, Thach TT, Wu C y Lee SJ: La betaína reduce el contenido de melanina celular a través de la supresión del factor de transcripción asociado a la microftalmía en los melanocitos murinos B16-F1. Food Sci Biotechnol 26: 1391‑1397, 2017.
67. Alam MB, Bajpai VK, Lee J, Zhao P, Byeon JH, Ra JS, Majumder R, Lee JS, Yoon JI, Rather IA, et al: Inhibición de la melanogénesis por cineol de Scolopendra subvenciones mutilans vía MAP-Kinase mediated MITF regulación a la baja y la degradación proteasomal de la tirosinasa. Informe científico 7: 45858,2017.
68. Hu S, Huang J, Pei S, Ouyang Y, Ding Y, Jiang L, Lu J, Kang L, Huang L, Xiang H, et al: El polisacárido de Ganoderma lucidum inhibe la melanogénesis inducida por UVB al antagonizar cAMP/PKA y ROS /vías de señalización MAPK. J Cell Physiol 234: 7330-7340, 2019.
69. Oh CT, Kwon TR, Jang YJ, Yoo KH, Kim BJ y Kim H: efectos inhibidores del extracto de Stichopus japonicus en la melanogénesis de células de ratón a través de la fosforilación de ERK. Mol Med Rep 16: 1079‑1086, 2017.
70. Huang HC, Wei CM, Siao JH, Tsai TC, Ko WP, Chang KJ, Hii CH y Chang TM: El extracto fluido supercrítico de café molido atenúa la melanogénesis a través de la regulación a la baja de las vías de señalización de PKA, PI3K/Akt y MAPK . Complemento basado en Evid Alternat Med 2016: 5860296, 2016.
71. Kim JW, Kim HI, Kim JH, Kwon OC, Son ES, Lee CS y Park YJ: Efectos del ganodermanondiol, un nuevo inhibidor de la melanogénesis del hongo medicinal Ganoderma lucidum. Int J Mol Sci 17: pii: E1798, 2016.
72. Oh TI, Jung HJ, Lee YM, Lee S, Kim GH, Kan SY, Kang H, Oh T, Ko HM, Kwak KC, et al: Zerumbone, un sesquiterpeno de jengibre tropical de zingiber officinale roscoe, atenúa - Melanogénesis inducida por MSH en células B16F10. Int J Mol Sci 19: pii: E3149, 2018.
73. Chang TS: Inhibidores naturales de la melanogénesis que actúan a través de la regulación a la baja de la actividad de la tirosinasa. Materiales (Basilea) 5:1661‑1685, 2012.
74. Sánchez-Ferrer A, Rodríguez-López JN, García-Cánovas F y García-Carmona F: Tirosinasa: una revisión exhaustiva de su mecanismo. Biochim Biophys Acta 1247: 1-11, 1995.
75. Matoba Y, Kumagai T, Yamamoto A, Yoshitsu H y Sugiyama M: evidencia cristalográfica de que el centro dinuclear de cobre de la tirosinasa es flexible durante la catálisis. J Biol Chem 281: 8981‑8990, 2006.
76. Menter JM, Etemadi AA, Chapman W, Hollins TD y Willis I: Despigmentación in vivo por derivados de hidroxibenceno. Melanoma Res 3: 443-449, 1993.
77. Briganti S, Camera E y Picardo M: enfoques químicos e instrumentales para tratar la hiperpigmentación. Pigment Cell Res 16: 101‑110, 2003.
78. Kang WH, Chun SC y Lee S: terapia intermitente para el melasma en pacientes asiáticos con agentes tópicos combinados (ácido retinoico, hidroquinona e hidrocortisona): estudios clínicos e histológicos. J Dermatol 25: 587‑596, 1998.
79. Guevara IL y Pandya AG: Melasma tratado con hidroquinona, tretinoína y un esteroide fluorado. Int J Dermatol 40:212-215, 2001.
80. Badreshia-Bansal S y Draelos ZD: información sobre los cosmecéuticos para aclarar la piel de las mujeres de color. J Drogas Dermatol 6: 32-39, 2007.
81. Parvez S, Kang M, Chung HS, Cho C, Hong MC, Shin MK y Bae H: Estudio y mecanismo de los agentes despigmentantes y aclaradores de la piel. Phythother Res 20: 921‑934, 2006.
82. Haddad AL, Matos LF, Brunstein F, Ferreira LM, Silva A y Costa D Jr: un ensayo clínico, prospectivo, aleatorizado y doble ciego que compara el complejo blanqueador de la piel con hidroquinona frente a placebo en el tratamiento del melasma. Int J Dermatol 42: 153‑156, 2003.
83. Gupta AK, Gover MD, Nouri K y Taylor S: El tratamiento del melasma: una revisión de los ensayos clínicos. J Am Acad Dermatol 55:1048‑1065, 2006.
84. Kim DS, Park SH, Kwon SB, Li K, YounSW y Park KC:(-)-epigalocatequina-3-galato e hinokitiol reducen la síntesis de melanina a través de la disminución de la producción de MITF. Arch Pharm Res 27:334-339, 2004.
85. Fan M, Zhang G, Hu X, Xu X y Gong D: Quercetina como inhibidor de la tirosinasa: actividad inhibidora, cambio conformacional y mecanismo. Food Res Int 100: 226‑233, 2017.
86. Jones K, Hughes J, Hong M, Jia Q y Orndorff S: Modulación de la melanogénesis por aloesina: un inhibidor competitivo de la tirosinasa. Pigment Cell Res 15: 335-340, 2002.
87. Jin YH, Lee SJ, Chung MH, Park JH, Park YI, Cho TH y Lee SK: La aloesina y la arbutina inhiben sinérgicamente la actividad de la tirosinasa a través de un mecanismo de acción diferente. Arch Pharm Res 22: 232‑236, 1999.
88. Solano F, Briganti S, Picardo M y GhanemG: agentes hipopigmentantes: una revisión actualizada sobre aspectos biológicos, químicos y clínicos. Pigment Cell Res 19: 550‑571, 2006.
89. Satooka H y Kubo I: resveratrol como inhibidor de tipo kcat para tirosinasa: inhibidor de melanogénesis potenciado. Bioorg Med Chem 20: 1090-1099, 2012.
90. Lee TH, Seo JO, Baek SH y Kim SY: Efectos inhibitorios del resveratrol sobre la síntesis de melanina en la pigmentación inducida por ultravioleta B en la piel de cobayo. Biomol Ther (Seúl) 22:35-40, 2014.
91. Chen J, Yu X y Huang Y: mecanismos inhibidores de la glabridina en la tirosinasa. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc 168:111‑117, 2016.
92. Lin Y, Kuang Y, Li K, Wang S, Song W, Qiao X, Sabir G y Ye M: Detección de productos naturales bioactivos de una biblioteca de 67 compuestos de Glycyrrhiza inflate. Bioorg Med Chem 25: 3706‑3713, 2017.
93. Fu B, Li H, Wang X, Lee FS y Cui S: Aislamiento e identificación de flavonoides en el regaliz y un estudio de sus efectos inhibitorios sobre la tirosinasa. J Agric Food Chem 53: 7408-7414, 2005.
94. Nerya O, Vaya J, Musa R, Izrael S, Ben-Arie R y Tamir S: Glabrene e isoliquiritigenina como inhibidores de tirosinasa de raíces de regaliz. J Agric Food Chem 51: 1201-1207, 2003.
95. Yang SH, Tsatsakis AM, Tzanakakis G, Kim HS, Le B, Sifaki M, Spandidos DA, Tsukamoto C, Golokhvast KS, Izotov BN, metal: Soyasaponin Ag inhibe la melanogénesis inducida por MSH en células de melanoma B16F10 a través de la regulación negativa de TRP2. Int J Mol Med 40: 631‑636, 2017.
96. Wang Y, Curtis-Long MJ, Lee BW, Yuk HJ, Kim DW, Tan XF y Park KH: Inhibición de la actividad de la tirosinasa por compuestos de polifenoles de las raíces de Flemingia philippinensis. Bioorg Med Chem 22: 1115-1120, 2014.
97. Takahashi M, Takara K, Toyozato T y Wada K: una nueva chalcona bioactiva de Morus australis inhibe la actividad de tirosinasa y la biosíntesis de melanina en células de melanoma B16. J Oleo Sci 61:585-592, 2012.
98. Roh JS, Han JY, Kim JH y Hwang JK: efectos inhibidores de compuestos activos aislados de semillas de cártamo (Carthamus tinctorius L.) para la melanogénesis. Biol Pharm Bull 27: 1976‑1978, 2004.
99. Liang CP, Chang CH, Liang CC, Hung KY y Hsieh CW: actividades antioxidantes in vitro, capacidad de eliminación de radicales libres e inhibición de tirosinasa de compuestos flavonoides y ácido ferúlico de Spiranthes sinensis (Pers.) Ames. Moléculas 19: 4681‑4694, 2014.
100. Jhan JK, Chung YC, Chen GH, Chang CH, Lu YC y Hsu CK: contenido de antocianinas en la cubierta de la semilla de soja negra y su actividad anti-tirosinasa humana y actividad antioxidante. Int J Cosmet Sci 38: 319‑324, 2016.
101. Jeong HS, Gu GE, Jo AR, Bang JS, Yun HY, Baek KJ, Kwon NS, Park KC y Kim DS: la activación de Akt inducida por Baicalin reduce la melanogénesis a través de la regulación a la baja del factor de transcripción asociado a la microftalmía y la tirosinasa. Eur J Pharmacol 761: 19‑27, 2015.
102. Hwang JA, Park NH, Na YJ, Lee HK, Lee JH, Kim YJ y Lee CS: Coumestrol regula a la baja la producción de melanina en melanocitos murinos melan-a a través de la degradación de la tirosinasa. Biol Pharm Bull 40: 535-539, 2017.
103. de Freitas MM, Fontes PR, Souza PM, William Fagg C, Neves Silva Guerra E, de Medeiros Nóbrega YK, Silveira D, Fonseca-Bazzo Y, SimeoniLA, Homem -de-Mello M, et al: Extractos de hojas de Morus nigra L. estandarizados en ácido clorogénico, rutina e isoquercitrina: inhibición de la tirosinasa y citotoxicidad. PLoS One 11: e0163130, 2016.
104. Chen YS, Lee SM, Lin CC, Liu CY, Wu MC y Shi WL: estudio cinético sobre las actividades inhibidoras de la formación de tirosinasa y melanina del amarillo Carthamus aislado de Carthamus tinc-torus L. J Biosci Bioeng 115: {{3 }}, 2013.
105. Nihei KI y Kubo I: efecto sustituyente de los benzaldehídos en la inhibición de la tirosinasa. Plant Physiol Biochem 112: 278-282, 2017.
106. Moghrovyan A, Sahakyan N, Babayan A, Chichoyan N, Petrosyan M y Trchounian A: aceite esencial y extracto etanólico de orégano (Origanum vulgare L.) de la flora armenia como fuente natural de terpenos, flavonoides y otros fitoquímicos con acción antirradical , antioxidante, quelante de metales, inhibidor de tirosinasa y actividad antibacteriana. Curr Pharm Des25:1809‑1816, 2019.
107. Park HJ, Cho JH, Hong SH, Kim DH, Jung HY, Kang IK y Cho YJ: Actividades blanqueadoras y antiarrugas del ácido ferúlico aislado de Tetragonia tetragonioides en melanoma B16F10 y células de fibroblastos CCD-986sk. J Nat Med 72:127-135, 2018.
108.Rao AR, Sindhuja HN, Dharmesh SM, Sankar KU, Sarada R y Ravishankar GA: Inhibición eficaz del cáncer de piel, tirosinasa y propiedades antioxidantes de la astaxantina y los ésteres de astaxantina del alga verde Haematococcus pluvialis. J Agric Food Chem 61: 3842‑3851, 2013.
109. Niwano T, Terazawa S, Nakajima H, Wakabayashi Y e Imokawa G: La astaxantina y la withaferina A bloquean las interacciones de las citoquinas paracrinas entre los queratinocitos humanos expuestos a UVB y los melanocitos humanos a través de la atenuación de la secreción de endotelina-1 y su flujo intracelular posterior señalización. Citocina 73: 184-197, 2015.
110. Tu CX, Lin M, Lu SS, Qi XY, Zhang RX y Zhang YY: la curcumina inhibe la melanogénesis en los melanocitos humanos. Phythother Res 26: 174‑179, 2012.
111.Cabanes J, Chazarra S y Garcia-Carmona F: El ácido kójico, un agente cosmético para blanquear la piel, es un inhibidor de unión lenta de la actividad de catecolasa de la tirosinasa. J Pharm Pharmacol 46:982-985, 1994.
112. Picardo M y Carrera M: Tratamientos nuevos y experimentales del cloasma y otra hipomelanosis. Dermatol Clin 25: 353-362, ix, 2007.
113. Dooley TP, Gadwood RC, Kilgore K y Thomasco LM: Desarrollo de una pantalla primaria in vitro para la pigmentación de la piel y agentes anti-melanoma. Skin Pharmacol 7: 188-200, 1994.
114. Curto EV, Kwong C, Hermersdörfer H, Glatt H, Santis C, Virador V, Hearing VJ Jr y Dooley TP: inhibidores de la tirosinasa de melanocitos de mamíferos: comparaciones in vitro de ésteres alquílicos de ácido gentísico con otros inhibidores putativos. Biochem Pharmacol 57: 663‑672, 1999.
115. Hsu KD, Chen HJ, Wang CS, Lum CC, Wu SP, Lin SP y Cheng KC: Extracto de micelio de Ganoderma formosanum como inhibidor de tirosinasa muy potente. Representante científico6: 32854, 2016.
116. Peng CC, Sun HT, Lin IP, Kuo PC y Li JC: La propiedad funcional del ácido 10-hidroxi-2-decenoico de la jalea real como inhibidor de la melanogénesis. Complemento BMC Altern Med 17: 392,2017.
117.Chen WC, Tseng TS, Hsiao NW, Lin YL, Wen ZH, Tsai CC, Lee YC, Lin HH y Tsai KC: descubrimiento del inhibidor de tirosinasa altamente potente, T1, con una capacidad significativa contra la melanogénesis mediante un ensayo in vivo de pez cebra y modelado molecular computacional. Informe científico 5: 7995, 2015.
118. Chang TS y Chen CT: efecto inhibitorio de la homoclorciclizina sobre la melanogénesis en células de melanoma B16 de ratón estimuladas por hormona estimulante de melanocitos. Arch Pharm Res 35: 119‑127, 2012.
119. Newton RA, Cook AL, Roberts DW, Leonard JH y Sturm RA: regulación postranscripcional de enzimas biosintéticas de melanina por AMPc y resveratrol en melanocitos humanos. J Invest Dermatol 127: 2216‑2227, 2007.
120.Ando H, Wen ZM, Kim HY, Valencia JC, Costin GE, Watabe H, Yasumoto K, Niki Y, Kondoh H, Ichihashi M, et al: La composición intracelular de los ácidos grasos afecta el procesamiento y la función de la tirosinasa a través de la ubiquitina -vía del proteasoma. Biochem J 394: 43-50, 2006.
121. Park SH, Kim DS, Kim WG, Ryoo IJ, Lee DH, Huh CH, Youn SW, Yoo ID y Park KC: Terreno: un nuevo inhibidor de la melanogénesis y su mecanismo. Célula Mol Life Sci61: 2878‑2885, 2004.
122.Lee S, Kim WG, Kim E, Ryoo IJ, Lee HK, Kim JN, Jung SH y Yoo ID: Síntesis y actividad inhibidora de la biosíntesis de melanina del (más/-) terreno producido por Penicillium sp. 20135. Bioorg Med Chem Lett 15: 471-473, 2005.
123. Cheung FW, Guo J, Ling YH, Che CT y Liu WK: Propiedad antimelanogénica del geodésico A en células de melanoma murino B16. Mar Drugs 10: 465-476, 2012.
124. Minwalla L, Zhao Y, Cornelius J, Babcock GF, Wickett RR, Le Poole IC y Boissy RE: inhibición de la transferencia de melanosomas de melanocitos a queratinocitos por lectinas y neoglucoproteínas en un sistema modelo in vitro. Pigment Cell Res 14: 185-194, 2001.
125. Seiberg M: Interacciones entre queratinocitos y melanocitos durante la transferencia de melanosomas. Pigment Cell Res 14: 236‑242, 2001.
126. Hakozaki T, Minwalla L, Zhuang J, Chhoa M, Matsubara A, Miyamoto K, Greatens A, Hillebrand GG, Bissett DL y Boissy RE: El efecto de la niacinamida en la reducción de la pigmentación cutánea y la supresión de la transferencia de melanosomas. Br J Dermatol 147: 20-31, 2002.
127. Paine C, Sharlow E, Liebel F, Eisinger M, Shapiro S y Seiberg M: un enfoque alternativo para la despigmentación mediante extractos de soja a través de la inhibición de la vía PAR-2. J Invest Dermatol 116: 587‑595, 2001.
128.Wallo W, Nebus J y Leyden JJ: Eficacia de un humectante de soya en el fotoenvejecimiento: un estudio doble ciego, controlado por vehículo, de 12-semanas. J Drogas Dermatol 6: 917‑922, 2007.
129.Lee CS, Nam G, Bae IH y Park J: Eficacia blanqueadora del ginsenósido F1 a través de la inhibición de la transferencia de melanina en melanocitos-queratinocitos humanos cocultivados y equivalente tridimensional de piel humana. J Ginseng Res. 43: 300-304, 2019.
130. Kuroda TS y Fukuda M: La proteína de unión a Rab27A Slp2-a es necesaria para la distribución de melanosomas periféricos y la forma celular alargada en los melanocitos. Nat Cell Biol 6: 1195‑1203, 2004.
131. Wu XS, Rao K, Zhang H, Wang F, Sellers JR, Matesic LE, Copeland NG, Jenkins NA y Hammer JA III: Identificación de un receptor de orgánulos para miosina-Va. Nat Cell Biol 4: 271-278, 2002.
132. Kudo M, Kobayashi-Nakamura K y Tsuji-Naito K: efectos bifuncionales de las flavonas O-metiladas de Scutellaria baicalensis Georgi en los melanocitos: inhibición de la producción de melanina y el transporte de melanosomas intracelulares. PLoS One 12: e0171513, 2017.
133. Lee HY, Jang EJ, Bae SY, Jeon JE, Park HJ, Shin J y Lee SK: actividad antimelanogénica de Gauguin D, un diterpenoide altamente oxigenado de la esponja marina Phorbas sp., a través de la modulación de la expresión y degradación de la tirosinasa. Mar Drogas 14: pii: E212, 2016.
134. Ando H, Ryu A, Hashimoto A, Oka M e Ichihashi M: El ácido linoleico y el ácido alfa-linolénico aclaran la hiperpigmentación de la piel inducida por los rayos ultravioleta. Arch Dermatol Res 290: 375-381, 1998.
135. Yoshimura K, Tsukamoto K, Okazaki M, Virador VM, Lei TC, Suzuki Y, Uchida G, Kitano Y y Harii K: Efectos del ácido retinoico todo trans sobre la melanogénesis en equivalentes de piel pigmentada y cultivo en monocapa de melanocitos. J Dermatol Sci 27 (suplemento 1): S68‑S75, 2001.
136. Yoshimura K, Harii K, Aoyama T, Shibuya F e Iga T: Un nuevo protocolo de blanqueamiento para lesiones cutáneas hiperpigmentadas con una alta concentración de gel acuoso de ácido all-trans-retinoico. AestheticPlast Surg 23: 285-291, 1999.
137. Ramos-e-Silva M, Hexsel DM, Rutowitsch MS y Zechmeister M: Hidroxiácidos y retinoides en cosméticos. Clin Dermatol 19: 460‑466, 2001.
138. Gupta AK, Gover MD, Nouri K y Taylor S: El tratamiento del melasma: una revisión de los ensayos clínicos. J Am Acad Dermatol 55: 1048‑1065, 2006.
139. Amer M y Metwalli M: La liquidez tópica mejora el melasma. Int J Dermatol 39: 299-301, 2000.
140. Virador VM, Kobayashi N, Matsunaga J y Hearing VJ: un protocolo estandarizado para evaluar los reguladores de la pigmentación. Anal Biochem 270: 207-219, 1999.
141. Lei TC, Virador VM, Vieira WD y Hearing VJ: un modelo de cocultivo de melanocitos y queratinocitos para evaluar los reguladores de la pigmentación in vitro. bioquímica anal305: 260‑268, 2002.
142. Hermanns JF, Petit L, Piérard-Franchimont C, Paquet P y Piérard GE: Evaluación de agentes tópicos hipopigmentados en lentigos solares de mujeres asiáticas. Dermatología 204: 281‑286, 2002.
143. Tengamnuay P, Pengrungruangwong K, Pheansri I y Likhitwitayawuid K: Extracto de duramen de Artocarpus lakoocha como ingrediente cosmético novedoso: evaluación de las actividades antitirosinasa in vitro e in vivo para blanquear la piel. Int J Cosmet Sci 28: 269‑276, 2006.
144. Alexis AF y Blackcloud P: ingredientes naturales para tipos de piel más oscuros: opciones crecientes para la hiperpigmentación. J Drugs Dermatol 12 (9 suplementos): s123-s127, 2013.
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